检验前标本采集和管理.

***一、分析前质量控制的重要性*二、标本采集的要求*三、如何管理好标本**随着检验医学的发展，实验室自动化与计算机信息技术的普及，人员素质的提高，人们的质量意识在不断增加，临床诊断和治疗越来越依赖于临床检验，这就使检验科面临新的挑战：必须重视实验室全面质量管理！*临床检验的目的是为临床提供准确可靠的实验诊断数据，为了保证实验数据的可靠性，在检验医学中必须坚持全面质量控制(totalqualitycontrol,TQC)，全过程质控包括分析前、分析中、分析后三个阶段的质量控制。有研究证实：在实验误差中分析前误差占总误差的30%以上，应引起医务工作者的重视。*分析前的问题*分析前误差的来源：*选择检验项目不正确1.9%；*采集标本不规范6.8%；*采集时间不对2.2%；*标本收集后未及时检测22.1%*。。。。。。。如何保证分析前标本的质量?*分析前工作验检申请标本采集标本管理病人准备采集过程运送、接收，处理、保存**1、病人的生理状况:年龄、性别、怀孕。。*2、饮食情况：饥饿、饮酒、*3、服药情况。。*4、运动*5、各种检查、治疗*6、其他注意事项。。。*7、拟采用的容器。。*特别注意*新生儿：ALP\ACP\SB\血常规的变化；*怀孕：TP\ALB\CRP\凝血功能的变化；*餐后：TP\ALB\TG\T-CH\K\AST升高50%*ALP\SB\P\BUN升高至少15%;*饥饿：SB\CR\UA升高；TP\TG\T-CH\BUN\aPO降低*饮酒：AST\ALT\TG\r-GT\UA升高;GLU降低；*运动：GLU\WBC\CK\CKMB\UA\CR升高；**许多药物服用后会影响检验结果：*1.影响标本的外观；*2.干扰分析过程；*3.改变代谢途径；*。。。。。。**服大剂量Vc使GLU,T-CH,TG假性降低；*应用大剂量青霉素后可使AST,CK,Cr,TP升高，使ALB,SB降低；*服用肝素及甲状腺素可使血中T-CH降低；而服用胆盐和氯丙嗪可使T-CH升高；*。。。。。。*对检验有影响的治疗和操作*手术:CRP,Alb,CK,BUN….*输液和输血:K,LDH….*穿刺，活检，注射，触诊，全身按摩*内窥镜*对检验有影响的治疗和操作*透析*体能应激—测力，负荷训练，心电图*安慰剂，药品*精神紧张:改变激素水平，Alb,GlU,FC,TC↑***采集的时间；*止血带的使用；*采血的体位；*添加剂的使用；*采血管的次序；*溶血、脂血的影响；*采血时间的选择*应在何时采样？上次采样后多长时间？一天内的什么时间？上次饮食后多长时间？服药后多长时间？**K上午比下午低；*T3夏季比冬季低；*V-D3在夏季较高；*SB,Fe清晨最高，血Ca中午最低。*白细胞、激素类变化较大！**止血带使用时间过长，会影响某些指标：Alb,Ca,ALP,AST等↑5~10%，BUN↓；PH↓;细胞内K外移，引起假性增高；*患者坐位与卧位采血，部分指标不一样！**血常规/流式细胞：EDTA-Na2/EDTA-K2：静脉采血2.0ml;凝血功能：枸橼酸钠/柠檬酸钠—空腹采血2.7ml,4小时内测定；如不能及时检测，分离出血浆4℃可保存8小时，否则-20℃保存，但不可反复冻融；血流变；肝素锂\钠抗凝，采血4.5ml,4小时内检测完毕；**HBV-DNA:普通管或血常规管！不得用肝素抗凝！4小时内分离血清或血浆。*HCV-RNA:用血常规管！不得用肝素抗凝！4小时内分离血浆.*乳酸测定：不得用止血带！NaF/K2C2O2（灰头），半小时内测定；*血沉：枸橼酸钠抗凝，采血1.6ml；**血氨：血常规管采集后放冰水中，快速送检！*血气分析：采集动脉血2.0ml,肝素抗凝；半小时内检测！*糖化血红蛋白：血常规管，采血2.0ml;**血培养瓶→红头/黄头→蓝头管→黑头管→绿头管→紫头管→灰头→其它*（美国CLSI推荐）**溶血原因：因止血带、采血管、采血、温度、震摇、抗凝、离心等因素造成；*显性：肉眼可见，HB达20mg/dl;*隐性：wbc\plt的破坏；HB未释放，可使K,ACP,Mg升高！*干扰的原因：*色素的产生；*酶的释放参与某些反应；*细胞内外成分不同！LDH\ACP\AST\K!!**产生原因*高蛋白饮食；*空腹时间不够；*输入脂肪乳及营养制剂；*干扰机制*脂类取代水，*浊度干扰，光吸收增加。**1.空腹12~14小时；*2.止血带使用不超过1分钟；*3.输液前或停止1小时以后；*4.在所有的检查、治疗前；*5.选用合适的抗凝管；*6.安排好采血次序；**7.尽量采用统一的体位*8.避免运动后采血*9.尽可能在上午7~9点采样；*10.输入脂肪乳和营养制剂，应在8小时以后采血；*11.在病历和申请单上记录样本采集的准确时间；12特殊状况要注明！**血液培养*1.采集时间：*一般在发热初期或发热高峰时采集，原则上选择在抗菌药物应用之前，对已用药而因病情不允许停药的患者，也应在下次用药前采集；*血液培养标本的采集*2.采集的部位和采集频率：*增加采样频率和多部位采样，可提高阳性率，至少24小时内不同部位采集3次或更多次；*3.标本采集的容量：采血量以每瓶8~10ml为宜，儿童和婴幼儿，分别采集样本3~5mL和1~2mL不等，骨髓采集量一般为1~2mL。*血液培养注意事项*1.推荐每份标本最少同时做两种培养，需氧和厌氧；*2.培养瓶必须温度平衡至室温；*3.无菌程序采取病人血样本，先将标本注入厌氧瓶，再注入需氧瓶，严格防止将空气注入厌氧瓶中。*血液培养注意事项：*4.注入标本后的血培养瓶务必立即送至细菌室，切勿放冰箱存放；*5.采集后的培养瓶在送检过程中应注意保温；**总体原则*根据检查目的留取标本；*注明标本的种类、来源；*防污染！*（1）尿液标本的收集*1.尿常规：随机尿，最好晨尿，也可饭后2~3小时尿—不超过2小时送检；*2.尿沉渣：需晨尿！不得少于10ml；.*3.尿生化定量：24小时尿，记尿量；*4.尿液蛋白分析：晨尿；*5.尿糖定量：空腹或餐后尿！*6.尿蛋白电泳：晨尿5.0ml即可。*尿液细菌培养标本的采集：*总体要求：需在应用抗菌药物之前或停用抗菌药5d之后留取标本，尿液在膀胱内停留6-8h以上。**注意：留取晨尿中段尿—无菌-专用管！**尿液标本的收集*防污染：*特别注意：*容器清洁*停止用药3天~1周；*计量准确！**脑脊液：不少于1ml,尽快送检；*胸腹水等穿刺液：不少于50ml,尽快送检；**总体原则*留取病理部分；*注意防污染*及时送检！*粪便标本的留取*1.挑取脓血，粘液部位的粪便2~3g,液状粪便取絮状物于无菌容器内送检。*2.要采集新鲜粪便做培养；*3.腹泻病人应尽量在急性期采集标本（3天以内）。*4.标本最好在用药前采集；*5.用于厌氧培养的标本最好在床边接种。*处理转运交接保存*标本的保存及运输*标本处置不当，可因血细胞的代谢，蒸发，化学反应，微生物降解，渗透压改变，气体逸散等，使某些指标发生变化；*Glu,CO2:降低；*K,TP,Cl:升高；*SB,CK被光分解。*正确保存及运送标本*1.减少标本在室温下的放置时间—不超过一小时；*2.及时送检；*3.选择合适的存放/运输条件---低温或室温；*4.尽量避光；*5.避免剧烈碰撞或摇动。**1、选择合适的离心条件；*2、不能及时检测的标本要存放合适的温度，并有明确标识；*3、标本转运、存放都要有交接记录；*4、特殊状况要记录，并及时告知临床或相关部门；**建立标本采集手册并全员培训；*尽快使用LIS,并不断完善；*报告单中至少要体现标本采集、接收、审核/报告时间；*制定不合格标本拒收原则，并告知临床；**要有标本交接记录；*标本如有特殊情况要在备注中标明；*当标本要求发生变化时，要及时告知相关部门；*定期统计不合格标本来源，必要时再培训！*谢谢！