生物负载测定

生物负载测定1微生物的定义和分类原核类：细菌、放线菌、支原体、蓝细胞立克次氏体、衣原体微生物真核类：真菌(酵母菌、霉菌）、原生动物、显微藻类非细胞类：病毒、类病毒、朊病毒2•定义：一切肉眼看不见或看不清楚的微小生物的总称。细菌细胞形态显微镜检照片•放大1000倍杆菌•放大1000倍球菌3微生物细胞结构示意图•细菌细胞结构图•真菌细胞结构图4微生物的五大共性1、体积小，面积大巨大的营养吸收面、代谢废物的排泄面和环境信息的接受面2、吸收多，转化快高速生长的物质基础，活的化工厂。3、生产旺，繁殖快大肠埃希菌20min分裂1次，48小时后的重量则达到地球的4000倍。注：因营养条件的限制，实际不可能发生。4、适应强，易变异极端环境的惊人适应能力5、分布广，种类多空气、水体、土壤、动植物都有分布，微生物有10多万种。5微生物的存在对医疗器械的影响•活的微生物对灭菌影响非过度灭菌的工艺因医疗器械上生物负载增加，灭菌难度加大，可能导致灭菌失败。•活的微生物对使用者危害灭菌不彻底的无菌医疗医疗器械，根据使用方式的不同，可能出现炎症、菌血症等病理反应。•微生物尸体对使用者的危害典型例子：G-菌细胞壁脂多糖成分(内毒素)通过输液进入人体血液，致使人体发热。6基本概念•生物负载的定义一件产品和/或无菌屏障上或其中存活的微生物总数。※对灭菌来说：生物负载应为无菌屏障内的所有微生物。因为，灭菌需要杀灭屏障内的所有微生物。※对使用来说：生物负载应为产品与人体的接触面，因为屏障通常不与人的自然腔道、血管、肌肉等接触。※对生产过程控制来说：生物负载应是屏障内所有的微生物，反映过程的控制水平。7基本概念•校正因子correctionfactor用于补偿无法从产品和/或微生物培养中完全采集的数值。•培养条件cultureconditions促进微生物复苏、生长和/或繁殖所采用的培养基和培养方式。•回收率recoveryefficiency用一特定技术从产品上采集和/或培养微生物能力的测定值。•样品份额（SIP）sampleitemportion从某一产品单元上取出的用于试验的部分。8产品选择的基本原则•选择和处理用于生物负载测定的产品的程序，应能确保所选产品对包括包装材料和过程的常规生产具有代表性。•若为生物负载测定的目的对产品进行分类，应记录每一分类内包含这一产品的理由。理由应包含所选产品在是整个分类里具有代表性的标准。•由于生物负载测定易受时间推移的影响而改变，应考虑生物负载测定的取样时限。9部分液体产品可能存在支持微生物生长的现象SIP取样的基本要求•如果已验证生物负载在本产品上或内是均匀分布的，则SIP可以是该产品的任何部分。•否则，样品应包含能代表所制产品的每种相应材质而随机选取的产品部位。•若已知生物负载分布，可以从认为对灭菌工艺最有严峻挑战的产品部分选择SIP。10SIP选择产品表面积植入物（不可吸收）质量粉末手术服植入物（可吸收）长度管路（直径一致）体积流体生物负载的测定测定方法微生物的采集（洗脱系数）采集微生物的技术能力（追求合适的采集技术）微生物的可能种类和它们在产品上的位置采集技术对微生物活性的影响（避免采集技术对微生物的伤害）检测时产品的物理或化学特性（确认：抑菌物质存在与否，如何去除）微生物的培养（培养系数修正）微生物计数11生物负载的微生物鉴定•鉴定的意义通过微生物的鉴定，了解微生物的基本来源，为日常微生物的控制提供依据；灭菌工艺的的适合性提供依据（是否存在耐受特定灭菌因子的芽孢菌的存在）。•通常鉴定的方法※常规鉴定：染色特性；细胞形态；菌落；选择性培养的使用；生化特性；※分子水平鉴定：DNA测序后与数据库提供遗传序列比对。12生物负载测定方法的确认•若测定方法中包括采集产品上微生物，则对该技术适当性的评价；※确定回收率,以便得到修正系数；※液体类的产品非常便捷,通常不需要回收率.•对包括培养条件和微生物计数技术在内的微生物计数适当性的评价；※不是所有的微生物可以通过单一培养基能有效培养出来的。•微生物鉴定技术适合性的评价。13常规测定和数据判读•确定样品大小和取样频率。•测定方法要规定,并形成作业指导书•根据生物负载的使用目的确定鉴定的程度,通常鉴定是否存在芽孢•生物负载数据用于确定灭菌工艺的处理程度，则根据具体要求进行应满足灭菌工艺设定、验证和常规控制特定标准中规定的关于生物负载数据使用的切实可行的要求。•规定医疗器械上或屏障内的生物负载的可接受限量。中国有GB15980-1995的标准，但未有明确的国际标准。如果生物负载的信息用于设定灭菌条件，则限量比较好设定。•根据一段时间得到的生物负载测定数据来确定趋势，进行趋势管理。14生物负载测定方法的维持•产品和/或生产过程的改变通常重新进行回收率的测试或生物负载的测试。•生物负载测定方法的改变应对生物负载测定常规方法的任何变化进行评价。※评价测定结果的变化的影响；※设新的回收率。※先前进行的确认和回收率是否仍有效。※生物负载测定方法的重新确认15重复回收确定回收率•重复回收进行回收率确认使用自然的产品，初次采集的微生物数值占连续多次采集总数值的比值。•方法的理论基础生物负载的确认方法应重复进行，直到回收的微生物累计数量没有明显增加。每重复一次后，从产品上或产品部分上洗脱液全部回收并计数。比较连续回收得到的累计结果。注意：本方法未必精确。产品上回收的微生物数量及实际存在的微生物数量之间的确切关系永远无法验证。16重复回收确定回收率•产品要求本身具有一定的微生物负载水平，如果产品本身负载水平低，则不适合采用该方法，应采用产品人工接种法。•重复采集的次数准确的重复次数通常取决于产品特性，构成生物负载的微生物和初始污染水平等。预试验可用于确定重复的次数。•在某些产品上，进行重复处理后有必要确定产品上是否还存在存活微生物。这可以通过以下方法实现：※用熔化的回收培养基涂在产品表面上，让培养基变硬，然后使产品在规定的培养条件下进行培养形成的菌落计数。※将产品浸于液体回收培养基中，在规定的培养条件下，检查是否生长。浸于液体培养基并培养后，若产品中的一小部分出现存活的微生物，可通过MPN方法来计数结果。但是若全部结果都表明有微生物生长，则不能采用MPN法，应重新考虑确认方法。17重复回收的修正系数18处理产品数123451605070554521012523310200401001琼脂覆盖21210总的菌落计数7364795349第一次处理：6050705545总数：7364795849第一次处理的回收率：82%78%89%95%92%第一次处理后的平均回收率：=87.2%范围=78%~95%计算中已包括了琼脂覆盖得到的菌落数。某些医疗器械可能会无法应用琼脂覆盖。运用首次处理后平均回收率，回收效率的修正系数可为：15.12.87100有些应用中可使用平均回收率范围的最低值，以反应出最坏情况。这一决定将会影响数据的使用。产品接种法确定回收率•产品接种法确定回收率产品上人工接种微生物后，初次采集的微生物数量占接种到产品上的微生物的比值。可为每一产品计算百分率，并用其确立回收率。•产品的要求产品首先应进行适合的灭菌，并确保可能对微生物有抑制的灭菌介质的有效去除。如用EO灭菌时，则应验证残留水平是否存在对微生物的抑制作用。19产品接种法确定回收率•接种的微生物最常用需氧菌芽孢接种，因为使用细菌繁殖体时，常因干燥失去活性，所以通常不使用繁殖体。芽孢悬液分布在产品上，应包括最难洗脱的部位。但应注意为了刻意追求WORSTCASE，将芽孢全部接种在最难的位置，导致回收率过低的异常。20接种法的修正系数•制备悬液稀释液，每0.1mL中含有100个芽孢。向器械所选部分接种0.1mL该稀释悬液，并在单项流状态下干燥。•注意接种体积，体积过大不易干燥；体积过小，则分布不均匀。•使经接种的产品经受得住所选采集技术，采集的平均芽孢数是35，其范围为25～45之间。•回收率的修正系数如下：219.235100微生物采集技术和设备•袋蠕动将试验样品和一已知体积的洗脱液装在一个无菌胃型袋中。开动往复式搅棒，使洗脱液贯穿试验样品内外。应规定处理时间。该方法尤其适用于软质、纤维和/或吸附性材料，但可能不适用于能刺破袋的任何材质（如带针或含有坚硬部分的器械）。若使用了较大大量的洗脱液，可能会生成含有低浓度微生物的悬浮液。可使用膜过滤法滤掉洗脱液。22微生物采集技术和设备•超声波洗脱将试验样品浸入装有已知体积洗脱液的适当容器中。将容器连同内装物一起在超声波清洗器中进行处理，或将超声波探头浸入到容器内洗脱液中进行处理。超声波也能使微生物失去活性，尤其是大能量传输时，使用超声波探头会比超声波清洗器更有可能使其失去活性。根据要求应验证超声法。应规定超声处理的常规频率和处理时间。而且，还应规定试验样品在超声波清洗器中的安放位置。应注意限制同时进行处理的试验样品数量，以便阻断超声处理源。该方法尤其适用于不透液体的固体试验样品以及形状复杂的产品。该方法对某些医疗器械可能产生破坏作用，尤其是对带有电子部件的器械，如植入式脉冲发生器。超声处理能量和超声处理持续时间不应太强或太长，以免破坏微生物并导致死亡，或是使洗脱液过热。23微生物采集技术和设备•振摇（机械或手工方式）将试验样品浸入装有已知体积洗脱液的适当容器中，并用机械振动器（如往复式、轨道或机械腕摇床）进行振摇。也可用手工振摇，但其效力会因操作人员而异。应规定振摇时间和频率。可以加入一定大小的玻璃微珠增加表面磨损以及由此提高回收效率。加入的玻璃微珠的大小以及振摇时间和频率不能导致过热和/或对微生物造成可能的破坏。增加玻璃微珠将增加微生物可附着的表面积。24微生物采集技术和设备•涡旋混合将试验样品浸入装有已知体积洗脱液的密闭容器内，该容器压在放置在旋涡混合器的旋转垫以形成涡旋。涡旋的形成取决于手动施加的压力。涡旋中的变化会使微生物洗脱产生差异。应规定所用容器、混合时间以及设定的混合器的速度。该方法操作简单快捷，但仅适用于小的试验样品。•冲洗让洗脱液通过试验样品的内腔。可以靠重力或泵来使液体流动。另外也可将洗脱液充入产品中，夹住并抖动。应规定器械与洗脱液的接触时间、冲洗速度及液体体积。器械结构及腔体尺寸会限制从内表面完全移除微生物所必须的冲力。25微生物采集技术和设备•搅切（碎裂）将试验样品浸入装有已知体积洗脱液的适当容器内。在规定的一段时间内搅切或振摇试验样品的时间。根据试验样品和搅切器来规定搅切时间，但不应超过会导致洗脱液过热和对微生物造成破坏。该技术提供了将试验样品分成足够小的部分的方法，以便通过接种平板培养技术对微生物进行计数。•擦拭含有吸附性材料的棉拭子通常被固定于杆或把手上。样品材料可以是可溶性的或不可溶性的。通常使用的方法是用洗脱液湿润棉拭子，并用棉拭子擦拭界定好的试验样品的表面。在有些情况下，可以先润湿表面，然后用干棉拭子擦拭，这样可提高回收效率。然后将棉拭子转放至洗脱液中，并搅动从棉拭子上洗脱微生物。另外，若使用的是可溶性棉拭，拭子会溶解到稀释液中。擦拭法是对不规则形状产品或难接近的区域取样的一个有效的方法。该方法也可用于大面积区域的取样。该方法会因擦拭方式的不同而更易出错。而且，通过擦拭不可能将表面上的全部微生物都收集起来。有些微生物会被棉拭子本身吸附，以致于被检测不到。棉拭子中不应含有灭菌剂或抑菌剂。26洗脱液体27溶液水中的浓度应用缓冲蛋白胨水0.067mol/L磷酸盐；0.43%氯化钠；0.1%蛋白胨；通用六偏磷酸钠林格氏溶液1/4强度溶解海藻酸钙拭子蛋白胨水0.1%～1.0%通用磷酸盐缓冲溶液0.02mol/L磷酸盐；0.9%氯化钠；通用林格氏溶液1/4强度通用氯化钠0.25%～0.9%通用硫代硫酸盐林格氏溶液1/4强度中和余氯水稀释含水样品；计数前制备可溶材料的等渗压溶液；%此表并未包括全部。表面活性剂，如聚山梨醇酯（Tween）80可以添加到洗脱液和稀释液中。根据具体的应用，通常浓度在0.01%～0.1%之间。应使用适当浓度的表面活性剂，并加以特殊处理以