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0第一部分生物化学与分子生物学概论本部分的内容为生物化学实验中所涉及的主要原理。介绍如何正确记录实验过程及书写实验报告的一般规则，是训练学生进行正规实验寻林的重要内容。普通实验技术包括玻璃仪器的洗涤，洗液的配制，吸量管的使用、混匀的方法以及过滤、离心等一般实验室技术。实验样品的制备着重讨论在生物化学实验中，血液、尿液样品及组织材料的采集和处理，匀浆制备和组织浸出液制备。离心分离技术、电泳原理、分光分析、层析分离技术，重点讨论这些重要技术的原理，内容则尽可能简洁扼要，作为具体实验内容的参考。一.实验记录和实验报告的书写实验是在理论指导下的科学实践，目的在于经过实践掌握科学观察的基本方法和技能，培养学生科学思维、分析判断和解决实际问题的能力。也是培养探求真知、尊重科学事实和真理的学风，培养科学态度的重要环节。（一）实验记录记录实验中观察到的现象、结果和数据，及时地记录在激烈路本上。原始数据必须准确简练、详尽、清楚。记录时不能夹杂主观因素，在定量实验中观测的数据，如称量物的重量、滴定管的读数、光密度值等，都应设计一定的表格，依据仪器的精确度记录有效数字。完整的实验记录包括实验日期、实验题目、目的、操作、结果。（二）实验报告实验结束后，应及时整理和总结实验结果及记录，按照下列顺序写出实验报告：1.实验名称（Thetitleofexperiment）：2.目的（Objective）：3.原理（Principle）：最好使用简式。4.操作步骤（Operationalprocedure）：5.实验记录6.计算与结果（CalculationandResults）：7.讨论（Discussion）：对实验方法，实验结果和异常现象进行探讨和评论，以及对于实验设计的认识、体会和建议。二、普通实验技术（一）玻璃仪器的洗涤与清洁玻璃仪器的洗涤与清洁直接影响实验结果的准确性，因此玻璃仪器的洗涤工作是很重要的。1.新购置玻璃仪器的清洗新购置来的玻璃仪器表面附着有游离碱质，应先用肥皂水洗刷后再用流水冲洗，浸泡于I－2％HCl中过夜，取出后再用流水冲洗，最后用蒸馏水冲洗2－3次，在干燥箱中烤干或自然晾干，备用。2.使用过的玻璃仪器的洗涤·（1）一般玻璃仪器：烧杯、三角烧杯、试剂瓶、试管等，可先用洗衣粉或肥皂水刷洗，将器皿内外壁细心地刷洗，使其尽量多地产生泡沫，然后再用自来水洗干净，洗至容器内壁光洁不挂水珠为止，最后用蒸馏水冲洗2－3次，晾干备用。1（2）容量仪器：吸量管、容量瓶、滴定管等在使用后立即用清水冲洗，勿使粘污物质干涸，并及时用流水或洗衣粉水尽量洗涤，稍干后有铬酸洗液浸泡数小时，然后用自来水反复冲洗，将洗液完全洗去，最后用蒸馏水冲洗2—3次，晾干备用。（3）比色杯：用毕立即用自来水反复冲洗干净，如不干净时可用HCl或适当溶剂冲洗（避免用较强的碱液或强氧化剂清洗），再用自来水冲洗干净。切忌用试管刷或粗糙的布或纸擦洗，以保护比色杯透光性，冲洗后倒置晾干备用。（二）清洗液的原理与配制1.肥皂水，洗衣粉溶液和去污粉：是常用的洗涤剂，有乳化作用，可除去污垢，能使脂肪、蛋白质及其它粘着性物质溶解或松弛，一般玻璃仪器可直接用肥皂水浸泡或刷洗。2.铬酸洗液（三）量器类的使用法量器是指对液体体积进行计量的玻璃器皿，如滴定管、移液管、容量瓶、量筒、刻度吸量管、刻度离心管及自动加液管等。l.滴定管：滴定管分常量与微量滴定管。常量滴定管又分为酸式与碱式两种，各有白色、棕色之分。酸式滴定管用于盛装酸性、氧化性以及盐类的稀溶液。碱式滴定管用来盛装碱性溶液。棕色滴定管用于盛装见光易分解的溶液。常量滴定管的容积有20、25、50、100毫升四种规格。微量滴定管分为一般微量滴定管和自动微量滴定管，容积为5、10g升等规格，刻度精度因规格不同而异。滴定管主要用于容量分析。它能准确读取试液用量，操作比较方便。一般是左手握塞，右手持瓶；左手滴液体，右手摇动。在滴定台上衬以白纸或者白磁板，以便观察锥形瓶内的颜色。滴定速度以10ml/min，即每秒3～4滴为宜。接近终点时，滴速要慢。甚至每秒半滴或l/4滴地进行滴定，以免过量。达到终点后稍停l～2分钟，等待内壁挂有的溶液完全流下时再读取刻度数。正确读取容积刻度是减少容量分析实验误差的重要措施。滴定管的读数方法，可依个人的习惯而不同。但是在同一实验中读取容积刻度时，必须以液面的同一特征标志为准，以保证其系统误差。一般读数方法∶普通滴定管读取数据，双眼与液面同水平读数。有色液读取数据是溶液弯月面两侧最高点连线与刻度线重合点°无色液读取数据是溶液弯月面最低点水平线与刻度线重合点。2．吸量管可准确地量取溶液的体积。（1）分类：常用分三类：①奥氏吸量管：准确量取0．5毫升、l毫升、2毫升液体时用。每根吸量管上只有一个刻度，放液时必须吹出量后残留在吸量管尖端的液体，主要用于量取粘滞系数大的液体。②移液管：准确量取5毫升、10毫升、25毫升等较多体积液体时用。每根吸量管上只有一个刻度，放出液体后，将吸量管尖在容器内壁上继续停留15秒，注意不要吹出尖端最后的部分。③刻度吸量管：供量取10毫升以下任意体积的液体时用。分全流出式与不完全流出式。全流出式：一般包括尖端部分，欲将所量取液体全部放出时，须将残留管尖的液体吹出。此类吸量管的上端常标有吹字。不完全流出式：若吸量管上端未标有吹字样，则残留管尖的液体不必吹出o其刻度不包括吸2量管的最后一部分。（2）吸量管的使用①选择：使用前先根据需要选择适当的吸量管，刻度吸量管的总容量最好等于或稍大于最大取液量。临用前要看清容量和刻度。②执管：用拇指和中指（辅以无名指），持吸量管上部，用食指堵住上口并控制液体流速，刻度数字要对向自己。③取液：用另一只手捏压橡皮球，将吸量管插入液体内（不得悬空，以免液体吸入球内），用橡皮球将液体吸至最高刻度上端l～2cm处，然后迅速用食指按紧管上口，使液体不致于从管下口流出。④调准刻度：将吸量管提出液面，吸粘性较大的液体（如：全血、血清、血浆）时；先用滤纸擦干管尖外壁，然后用食指控制液体缓慢下降至所需刻度（此时液体凹面，视线和刻度应在同一水面上），并立即按紧吸量管上口o⑤放液：放松食指，使液体自然流入受器内。放液时，管尖最好接触受器内壁。但不要插入受器内原有的液体中，以免污染吸量管和试剂。⑥洗涤：吸血液、血清等粘稠液体及标本（尿液）的吸量管，使用后要及时用自来水冲洗干净。吸一般试剂的吸量管可不必马上冲洗，待实验完毕后再冲洗。冲洗干净，最后用蒸馏水冲洗，晾干备用。3.容量瓶用于配制一定浓度标准溶液或试样溶液。颈上刻有标线，表示在20℃，溶液装至标线的容积。有10、25、50、100、250、500、1000、2000毫升几种规格，并有白色、棕色两种颜色。使用方法：使用前应先检查容量瓶的瓶塞是否漏水，瓶塞应系在瓶颈上，不得任意更换。瓶内壁不得挂有水珠，所称量的任何固体物质都必须先在小烧杯中溶解或加热溶解，冷却至室温后，才能转移到容量瓶中。4.量筒量简是用来量取要求不太严格的溶液体积的。在配制要求不太准确的溶液浓度时，使用量筒比较方便。它有从5～2000ml十余种规格。用量筒量取液体体积是一种粗略的计量法，所以，在使用中必须选用合适规格，不要用大量筒计量小体积，也不要用小量筒多次量取大体积的溶液。读取刻度的方法与容量瓶和滴定管相同。（四）一般操作法1.溶液的混匀样品与试剂的混匀是保证化学反应充分进行的一种有效措施。为使反应体系内各物质迅速地互相接触，必须借助于外加的机械作用。混匀时须防止容器内液体溅出或被污染，严禁用手指直接堵塞试管口或锥形瓶口振摇。溶液稀释时也须混匀。混匀的方法通常有以下几种：⑴搅动混匀法：适用于烧杯内溶液的混匀。如固体试剂的溶解和混匀。搅拌使用的玻璃棒必须两头都圆滑，棒的粗、细、长、短必须与容器的大小和所配制的溶液的多少呈适当的比例关系。搅拌时必须使搅棒沿着器壁运动，以免搅入空气或使溶液溅出。倾入液体时必须沿着器壁慢慢倾入，以免产生大量气体，倾倒表面张力低的液体更要缓慢仔细。研磨配制胶体溶液时，搅棒沿着研体的一个方向进行，不要来回研磨。⑵旋转混匀法：适用于锥形瓶；大试管内溶液的混匀。手持容器使溶液作离心旋转．以手腕，肘或肩作轴旋转。3⑶指弹混匀法：适用于离心管或小试管内溶液的混匀。左手持试管上端，用右手指轻轻弹动试管下部，或用一只手的大拇指和食指持管的上端，用其余三个手指弹动离心管，使管内的液体作旋涡运动⑷振荡混匀法：适用振荡器使多个试管同时混匀，或试管置于试管架上，双手持管架轻轻振荡，达到混匀的目的。⑸倒转混匀法：适用于有塞量筒和容量瓶及试管内容物的混匀。⑹吸量管混匀法：用吸量管将溶液反复吸放数次，使溶液混匀。⑺甩动混匀法：右手持试管上都，轻轻甩动振荡即可混匀。⑻电磁搅拌混匀法：在电磁搅拌机上放上烧杯，在烧杯内放入封闭于玻璃或塑料管中的小铁棒，利用磁力使小铁棒旋转以达到混匀杯中液体的目的。适用于酸碱自动滴定，pH梯度滴定等。2.过滤法是分离沉淀和滤液的一种方法，可用于收集滤液，收集或洗涤沉淀。可用漏斗及滤纸或吸滤法。操作时应注意以下几点：⑴制备血滤液等实验时，要用干滤纸而不能用水把滤纸先弄湿，因为湿滤纸会影晌血液稀释的体积。⑵折叠滤纸的角度应与漏斗相合，使滤纸上缘能与漏斗壁完全吻合，不留缝隙。—般采用平折法（即对折后再对折）。⑶向漏斗中加溶液时，使其沿玻璃棒慢慢流下；玻璃棒不能在漏斗中搅动。倒入速度不要太快，以防损失，不得使液面超过滤纸上缘。⑷较粗的过滤可用脱脂棉或纱布代替滤纸，有时也可用离心沉淀法代替过滤法。3.加热法可直接用火（电炉）或水浴加热，使用水浴时防止浴中容器倾倒。酒精灯使用注意：①禁止头碰头点燃。②用过后先用盖子盖一下，灭后再拿下重盖，防止形成真空，盖子打不开。③加热时管口不要对着人。④加热时管夹夹住试管的上l／3部分，均匀加热，再固定管底加热。4.烤干法烤干试管时，应将管口向下倾斜约成45°角，由上往下，先烤管底，最后将管口的水份烤干。烤干时须经常移动以免炸裂。试管等普通玻璃器材，也可在烘箱内烘烤干。三、实验样品的制备在生物化学实验中，无论分析组织中各种物质的含量，或是探索组织中的物质代谢过程，都需要利用预先处理过的特定生物样品。掌握此种实验样品的正确处理与制备方法是做好生物化学实验的先决条件。在基础生物化学实验中，最常用的实验样品是人或动物的血、尿和组织等。现将动物或人的这些样品制备的方法扼要介绍如下：（一）血液样品收集动物或人的血液样品时应使用清洁干燥的容器以防止溶血。1.全血取出血液后，迅速盛于含有抗凝剂的试管内，同时轻轻混匀，使血液和抗凝剂充分混匀，以免血液凝固。取得的全血如不立即进行实验，应储存于4℃冰箱中。常用的抗凝剂草酸盐（1~2mg/ml全血）、柠檬酸盐（5mg/ml全血）、氟化钠（5~10mg/ml4全血）、肝素（0.01~0.2mg/ml全血）。可将抗凝剂配成适度的水溶液，按需要量加入试管中，并涂布于试管壁，横放烘干备用。2.血浆将上述抗凝之全血在离心机中离心，白细胞下沉，上清液既为血浆。分离血浆时必须严格控制溶血，除采血时一切用具都需要清洁干燥外，取出之血液也不能剧烈振摇。3.血清收集的血液不加抗凝剂，在室温下约5~20分钟即自行凝固，通常经3小时，血块收缩而分离出血清。血块收缩后，应及早分离出血清，一面溶血。若血块粘着容器壁过紧，血清不易分离出来，可用细玻璃棒轻轻剥离，将血液离心，可分离的较快、较多。4.无蛋白血滤液分析血液中某些成分时，为了避免蛋白质的干扰，需预先除去血中的蛋白质成分。常用三氯醋酸、钨酸或氢氧化锌等沉淀剂与蛋白质作用，然后用过滤或离心方法制成无蛋白血滤液。（二）尿液样品一般定性实验样品可以用随时收集的新鲜尿液。定量测定尿液中各种成分时应收集24小时的尿液，混合后再取样。收集方法：一般在早晨一定时间排出残余尿弃去，以后每次尿液收集于清洁大玻璃瓶中，到第二天同一时间收集最后一次尿即可。把收集地4小时尿液充分混合后用量筒量准起总体积，然后取样分析。收集的尿液不能立即进行实验，则应置于冷处保存。必要时收集尿瓶中预先