活性维生素D3对去卵巢骨质疏松大鼠骨质量、维生素D代谢物水

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基金项目:湖北省卫生厅资助课题(编号:鄂卫发2008Y18)作者单位:1430022武汉,华中科技大学同济医学院附属协和医院骨代谢实验室;2432200武汉,武汉市黄陂人民医院骨科通讯作者:沈霖,Email:shenlinhb@.yahoo.com.cnDOI:103969/jissn16742591200901006·基础研究·活性维生素D3对去卵巢骨质疏松大鼠骨质量、维生素D代谢物水平及肾脏维生素D受体(VDR)mRNA表达的影响王介毅1,2,沈霖1,帅波1,杨艳萍1,郭向飞1,曹晴晴1,魏兵1[摘要] 目的 研究活性维生素D3对去卵巢骨质疏松大鼠骨质量25(OH)D3和1,25(OH)2D3水平及肾脏VDRmRNA表达的影响,为临床防治骨质疏松提供依据。方法 36只八月龄健康雌性SD大鼠随机分为3组,即模型组(Model),假手术组(Sham),活性维生素D3治疗组(Treatment),每组12只,对照治疗三月后全部处死,用双能X线骨密度仪及生物力学技术评估模型的骨密度及骨质量,采用酶联免疫吸附方法检测血清或组织中25(OH)D3和1,25(OH)2D3含量,用FQPCR方法检测肾脏组织中VDRmRNA的表达情况。结果 (1)模型大鼠股骨头及粗隆部的BMD及骨生物力学指标(最大载荷和最大压应变)均明显下降(P<005);(2)活性维生素D3治疗组与模型组比较,血清、肝脏和肾脏组织中25(OH)D3和1,25(OH)2D3的含量明显提高(P<005),与假手术组比较无统计学意义;(3)模型组大鼠肾脏VDRmRNA的表达显著低于活性维生素D3治疗组(P=0004)。结论 本实验结果提示适当补充活性维生素D3可有效的防治去卵巢大鼠骨量丢失和骨质量下降,为临床活性维生素D应用提供实验依据。[关键词] 维生素D受体;骨密度;骨生物力学;骨质疏松症;1,25(OH)2D3中图分类号:91;R681  文献标识码:AInfluenceofalfacalcidolonthelevelsofbonequality,vitaminDmetabolitesandrenalexpressionofvitaminDreceptor(VDR)mRNAinovariectomizedratsWANGJieyi,SHENLin,SHUAIBo,etal(UnionHospital,AffiliatedTongjiMedicalCollege,HuazhongUniversityofScienceandTechnology,Wuhan430022,China)[Abstract] Objective Toinvestigatetheinfluenceofalfacalcidolonthelevelsoftwobonemetabolismmakers,25hydroxyvitaminDand1,25dihydroxyvitaminD3,andrenalexpressionofVDRmRNAinovariectomizedrats,andtoexplorethemetabolismconditionsofvitaminDendocrinesysteminovariectomizedrats,thentofindoutacosteffectivemethodtopreventandtreatofpostmenopausalosteoporosis.Methods 36femaleSDrats(eightmonths)wererandomlydividedintomodelgroup,shamgroupandtreatmentgroup.Allratswerekilledthreemonthslater,andthendualenergyXrayabsorptiometry(DXA)andbiomechanicstestwereusedtoevaluateBMDandbonequalityofthemodel.ELISAmethodwasusedtodetectthecontentof25hydroxyvitaminDand1,25dihydroxyvitaminD3inserumortissue.While,fluorescencequantitativePCR(FQPCR)methodwasusedtoquantitativeanalysisofexpressionofrenalVDRmRNA.Results TheBMD,indexofmaximalloadandmaximalstressoffemoralheadortrochanterweredecreasedsignificantlyinmodelrats(P<005),while,thecontentof25hydroxyvitaminDand1,25dihydroxyvitaminD3discerninserum,·63·中华骨质疏松和骨矿盐疾病杂志 2009年3月第2卷第1期CHINJOSTEOPOROSISBONEMINERRES Vol.2 No.1 March20,2009liverandkidneywerehigherintreatmentgroup(P<005).Butcomparedwithshamgroup,therewasnosignificantdifference.TheexpressionofVDRmRNAhadastatisticalsignificancebetweentreatmentgroupandmodelgroup(P=0004).Conclusion Thisstudyshowsthatappropriateamountofalfacalcidolcaneffectivelypreventandtreatmentofbonelossandbonequlitydecreaseinovarectomizedratsandprovidetheevidencefortreatmentofpostmenopausalosteoporosis.[Keywords] VDR;BMD;bonebiomechanics;osteoporosis;1,25dihydroxyvitaminD3  维生素D内分泌系统在骨代谢调节中起着重要的作用,1,25(OH)2D3是重要的骨代谢调节激素(D激素),1,25(OH)2D3水平不足是老年人骨量丢失、骨基质矿化不良等骨代谢改变的重要启动因素之一。本实验研究去卵巢骨质疏松大鼠体内维生素D内分泌系统的代谢情况,探讨其可能的发病机制,并寻求一条经济有效的防治措施。材料和方法材料实验动物 8月龄健康雌性SpraneDawley(SD)大鼠(二级,购自华中科技大学同济医学院实验动物中心,动物合格证号:医动字20-137),36只,平均体重410±10g。使用的仪器及材料 美国生产的Hologic2000Plus型双能X线骨密度仪,日本岛津生产的AUTOGRAPH(AGSH10KN)型生物力学测定仪,德国Roche公司生产的LightCycler荧光定量PCR仪,英国IDS公司25(OH)D3及1,25(OH)2D3酶联免疫试剂盒,美国GIBCO公司的Trizol溶液;美国Biotium公司的SYBRGreenⅠ荧光染料;武汉大风生物科技有限公司的PROMEGA;上海枫岭生物技术有限公司的FTC2000;昆明贝克诺顿制药工业有限公司分装的活性维生素D3[1,25(OH)2D3]。分组及材料的准备实验分组 SD大鼠36只,随机分为3组,分别为模型组(Model),假手术组(Sham),活性维生素D3治疗组(Treatment),每组12只。模型制备及喂养取材 模型组和活性维生素D3治疗组的大鼠将卵巢摘除,假手术组仅切除卵巢附近的相当于卵巢大小的一小部分脂肪。药液配置与给药方法:活性维生素D3先用少量无水乙醇溶解,再用双蒸水配置成0625μg/100ml溶液,乙醇终浓度为04%,对试验大鼠生理无影响,溶液配置好后分装小试剂瓶内避光低温保存。按人鼠表面积比率换算等效计量法计算出治疗组大鼠每次用配制好的活性维生素D3溶液9ml(005625μg)/kg,每日两次灌胃,其余组给予等体积的不含活性维生素D3的04%乙醇灌胃,灌胃次数同活性维生素D3治疗组。对照治疗3月后,将36只大鼠心脏取血,离心分离出血清,取肝、肾等同一部位一小部分组织于冻存管中-70℃保存,取右侧大鼠股骨,小心剥离去除表面软组织,保留完整骨膜,冷生理盐水纱布冷藏保存。各观察指标检测方法骨密度的检测 取股骨样品,置双能X线骨密度仪扫描台上,采用美国生产的Hologic2000Plus型双能X线骨密度仪,测量大鼠股骨头及粗隆部BMD。各股骨在测定时保持统一位置,测定程序及条件按smallanimalsoftscans进行,分析程序按Subregionanalysisscans进行。结果由仪器配套打印机自动打印输出。骨生物力学的检测 取股骨样品,应用日本岛津生产的AUTOGRAPH(AGSH10KN)型生物力学测定仪进行三点弯曲试验,试验时参数:最大载荷20kg,跨距22cm,加载速度5mm/min,增益100,并计算出最大载荷(ML)和最大压应变(MS)。25(OH)D3和1,25(OH)2D3含量的测定 将肝、肾等组织室温复融后用生理盐水洗净去杂、称重、剪碎至10ml的组织匀浆器中,按1g组织加入5mlPBS缓冲液的比例进行组织匀浆,将组织匀浆液移入5ml离心管中20℃4000r/min离心20min,取上清后再10000r/min离心10min后取上清备用。检测操作过程严格按照试剂盒说明书进行。组织总RNA的提取 用滤纸吸干肾脏表面液体,将肾脏(约200mg)置于盛有液氮的研钵内,快速研成粉末状;迅速将粉末移入匀浆器,加入·73·中华骨质疏松和骨矿盐疾病杂志 2009年3月第2卷第1期CHINJOSTEOPOROSISBONEMINERRES Vol.2 No.1 March20,2009Trizol(100mg肾脏+2mlTrizol),冷冻匀浆,将匀浆后液体分装入EP管内,15~30℃孵育5min,加入氯仿(02ml氯仿1mlTrizol),盖紧盖子,用力摇动15s,15~30℃孵育2~3min,4℃12000r/min离心15min,取上清液至新EP管内;加75%乙醇沉淀,加DEPC处理水溶解RNA。VDRmRNA的测定 引物设计:引物由上海赛百胜公司依据Genebank数据库获得基因序列合成。VDR引物:上游CTGGATCTGAACGGAGAGGATTCT,下游AAGACTGGTTGGAGCGTAACATGA;βActin引物:上游AGACCTCTATGACAACACAGTGCTG,下游TCATCGTACTCCTGCTTGCTGA。在逆转录酶MMLV的作用下,将mRNA逆转录成cDNA分子,反应体系如下:H2O55μl、Oligo(dT18)10μl、TRNA60μl、RNasin05μl、5×buffer40μl、10mmol/LdNTP20μl、RTase10μl,反应条件:42℃60min,95℃5min。荧光定量PCR反应体系如下:cDNA1μl、Buffer10×5μl、MgCl2(25mmol/L)7μl、dNTP10mmol/L1μl、F(20pmol/l)08μl、R(20pmol/l)08μl、SYBRGreenⅠ1μl、Taq酶(5U/μl)05μl,H2O329μl,反应条件:94℃3min,(94℃30s,53℃30s,72℃30s)50个循环。Ct值的计算分析:2-ΔΔct=2-(Δct实验组-ΔCt对照组)ΔCt实验组=ΔCt目的基因-Ctβactin,ΔCt对照组=ΔCt目的基因-Ctβactin,统计方法统计学方法

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