蛋白结构解析流程概要

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结构解析和修正流程以下是我总结的晶体结构解析方法:I分子置换法使用condition:目标蛋白A有同源蛋白结构B,同源性30%以上。用到的软件及程序:HKL2000,CCP4,COOT,Phenix,CNS,解析过程:收集数据(X-RAY)--hkl2000处理数据--置换前数据处理分子置换(ccp4MolecularReplacement--MR)--COOT手工修正,氨基酸序列调换--phenixrefine--coot手工修正phenixrefine。。。__拉氏构象图上outlier为0为之,且R-free,R-work达到足够低的值。--phenix加水refine(溶剂平滑)。。。(若修正过程中有bias最好也用CNS修正一下)II同晶置换法--硒代蛋白使用condition:目标蛋白没有同源结构。用到的软件及程序:HKL2000,CCP4,COOT,Phenix,CNS,解析过程:收集数据(X-ray硒代蛋白及母体蛋白)--hkl2000处理数据--ccp4程序包搜索搜索硒信号(gap),相位确定--搭模---以硒代数据得到的pdb为模型和母体高分辨数据得到的mtz进行分子置换--后面修正过程与分子置换相似。各步骤介绍:I.hkl2000:将x-ray收集的图像编译转化为数字信息,得到的关键文件有.sca和.log,log文件会给出hkl2000处理的过程记录,sca文件是最终处理的输出文件。sca文件包含晶体的空间群等信息。带有可以被转化为电子密度图的信息。评价hkl2000处理是否成功的参数有数据完整度,最高分辨率等,一般希望处理出在完整度允许的情况下最高分辨率的数据。分子置换前处理:ccp4软件包a.datareduction,即将sca文件转换为mtz文件。用importedintegrateddata。b.cellcontentanalysis这个是晶体中蛋白聚集体数的分析,通过分析晶体含水量得到一个晶胞内的蛋白分子数。用mtz文件进行。含水量在40%-60%之间时对应得n即为正确值。这个聚集体数会在mr中使用。II.model选取:进行分子置换的model为已知的同源蛋白结构或硒代得到的pdb,对model的要求是越接近球形越好。一般用单体。从pdb库中下载了pdb后可以用vim编辑,选取自己想要的那一段做model。III.分子置换:ccp4软件包MR以选取好的model.pdb为模板,对mtz文件进行分子置换,这时要修改的程序参数为在晶体中寻找的model的个数,及分子量,model的个数通过N值来计算,如果model为单体的话,model个数即为n值。MR之后会得到一个pdb,一个mtz(电子密度图)。IV.修正:COOT修正:在coot中同时打开pdb和mtz,手工用命令将pdb残基突变为自己氨基酸的序列,并将氨基酸残基放入密度中。phenix修正:命令phenix.refineprotein.scaprotein.pdb修正完成后会得到一个protein—refine.pdb,一个protein_refine.coeff.mtz,一个data.mtz。其中pdb文件即为目标pdb,coeff.mtz为相应的电子密度图,data.mtz在第二轮coot手工修正后再phenix的时候代替sca的位置。phenix加水溶剂平滑修正对于结构质量的评价标准:拉氏构象图:outlier的数量要为0~(coot中看到)R-work和R-free的值,越低越好~(这个参数可以在phenix之后的.sol文件中看到)总结:HKL2000--.sca--datareduction--.mtz--cellcontentanalysis(n)--MR--.pdb,.mtz--cootmutation--phenix1(--pickoutgoodchain--MR2--phenix2)--coot--phenix......(CNS)......phenix+water.....*()中是我根据自己的修正加上去的,仅供参考硒代相位的确定以后再补吧~太长了

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