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常规转染技术可分为两大类，一类是瞬时转染，一类是稳定转染（永久转染）。前者外源DNA/RNA不整合到宿主染色体中，因此一个宿主细胞中可存在多个拷贝数，产生高水平的表达，但通常只持续几天，多用于启动子和其它调控元件的分析。一般来说，超螺旋质粒DNA转染效率较高，在转染后24-72小时内（依赖于各种不同的构建）分析结果，常常用到一些报告系统如荧光蛋白，β半乳糖苷酶等来帮助检测。后者也称稳定转染，外源DNA既可以整合到宿主染色体中，也可能作为一种游离体（episome）存在。尽管线性DNA比超螺旋DNA转入量低但整合率高。外源DNA整合到染色体中概率很小，大约1/104转染细胞能整合，通常需要通过一些选择性标记，如来氨丙基转移酶（APH；新霉素抗性基因），潮霉素B磷酸转移酶（HPH），胸苷激酶（TK）等反复筛选，得到稳定转染的同源细胞系。转染技术的选择对转染结果影响也很大，许多转染方法需要优化DNA与转染试剂比例，细胞数量，培养及检测时间等。一些传统的转染技术，如DEAE右旋糖苷法，磷酸钙法，电穿孔法，脂质体法各有利弊，其主要原理及应用特点见下表：除上述传统方法外，近年来国际上推出了一些阳离子聚合物基因转染技术，以其适用宿主范围广，操作简便，对细胞毒性小，转染效率高受到研究者们的青睐。其中树枝状聚合物（Dendrimers）和聚乙烯亚胺（Polyethylenimine，PEI）的转染性能最佳，但树枝状聚合物的结构不易于进一步改性，且其合成工艺复杂。聚乙烯亚胺是一种具有较高的阳离子电荷密度的有机大分子，每相隔二个碳个原子,即每“第三个原子都是质子化的氨基氮原子，使得聚合物网络在任何pH下都能充当有效的“质子海绵”(protonsponge)体。这种聚阳离子能将各种报告基因转入各种种属细胞，其效果好于脂质聚酰胺，经进一步的改性后，其转染性能好于树枝状聚合物，而且它的细胞毒性低。大量实验证明，PEI是非常有希望的基因治疗载体。目前在设计更复杂的基因载体时，PEI经常做为核心组成成分。线型PEI（LinePEI,LPEI）与其衍生物用作基因转染载体的研究比分枝状PEI（BranchedPEI,BPEI）要早一些，过去的研究认为在不考虑具体条件，LPEI/DNA转染复合物的细胞毒性较低，有利于细胞定位，因此与BPEI相比应该转染效率高一些。但最近研究表明BPEI的分枝度高有利于形成小的转染复合物，从而提高转染效率，但同时细胞毒性也增大。超高分枝的、较柔性的PEI衍生物含有额外的仲胺基和叔胺基，在染实验中发现这种PEI的毒性低，但转染效率却较高。NCBIACCESSIONMOLECULEMETHODNOTEAC_123456GenomicMixed一些可供选择的注释的基因组序列，主要用来标记病毒和原核生物。AP_123456ProteinMixedAC_标记序列对应的蛋白产物。NC_123456GenomicMixed完整的基因组分子序列，标记的类别包括基因组、染色体、细胞器、质粒。NG_123456GenomicMixed不完整的基因组区域，提供NCBI基因组注释途径。比较有代表性有不转录的假基因或者那些很难自行化注释的基因组簇。NM_123456NM_123456789mRNAMixed转录产物序列；成熟mRNA转录本序列。NP_123456NP_123456789ProteinMixed蛋白产物；主要是全长转录氨基酸序列，但也有一些只有部分蛋白质的部分氨基酸序列。NR_123456RNAMixed非编码的转录子序列，包括结构RNAs，假基因转子等。NT_123456GenomicAutomatedBAC或者鸟枪测序法的还未完全注释的测序序列。NW_123456NW_123456789GenomicAutomatedBAC或者鸟枪测序法的还未完全注释的测序序列。NZ_ABCD12345678GenomicAutomated收集的各种利用鸟枪法测序的测序计划，ABCD代表的是计划的名称。XM_123456XM_123456789mRNAAutomated转录产物；mRNA来自基因组注释，序列相当于基因组重叠群。XP_123456XP_123456789ProteinAutomated蛋白产物。序列相当于基因组重叠群。XR_123456RNAAutomated转录产物；非编码区来自基因组注释，序列相当于基因组重叠群。YP_123456YP_123456789ProteinMixed蛋白产物。不涉及到转录，主要用来标记细菌、病毒和线粒体。ZP_12345678ProteinAutomated蛋白产物，主要是用电脑自动注释。NS_123456GenomicAutomated未知生物分子基因组序列。