应用竞争PCR检测丙酸盐对体外培养牛肝细胞丙酮酸羧化酶mR

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应用竞争PCR检测丙酸盐对体外培养牛肝细胞丙酮酸羧化酶mRNA水平的影响徐闯,夏成,刘国文,王哲*,李家奎,张乃生,王兴龙,欧阳红生,张永亮(吉林大学农学部畜牧兽医学院,吉林长春130062)摘要:应用PC(丙酮酸羟化酶)基因组与PCcDNA相比包含内含子序列及在其中插入外源DNA序列的方法,改变PCcDNA的长度,成功构建PCcDNA的竞争DNA模板。然后应用竞争PCR方法研究丙酸盐对体外培养新生牛单层肝细胞PCmRNA水平的影响。使单层肝细胞培养液中丙酸钠浓度分别为0mmol/L、1.5mmol/L、2.5mmol/L、3.5mmol/L、4.5mmol/L、8.5mmol/L和11.5mmol/L,处理24小时,提总RNA、逆转录,在同一体系中用相同引物扩增目的带和竞争模板带。结果表明:随着丙酸钠浓度的升高PCmRNA水平呈上升趋势。指示肝细胞内PCmRNA的表达水平受培养液中丙酸钠浓度的影响。关键词:丙酮酸羧化酶mRNA;竞争PCR;肝细胞;内含子EffectionofPropionateontheExpressionofPyruvateCarboxylasemRNAinvitroculturebovineHepatocyteDeterminatedbyCompetiveReverseTranscriptionPolymeraseChainReactionXUChuang,XIACheng,LIUGuo-wen,WANGZhe*,LIJia-kui,ZHANGNai-sheng,WANGXing-long,OUYANGHong-sheng,ZHANGYong-liang(AgricultureDepartmentofJiLinUniversity,PrologueandVeterinaryInstitute,JiLin,Changchun130062,China)Abstract:CompetiveDNAtemplateofpyruvatecarboxylase(PC)cDNAwasconstructedthroughthemethodsofintronsequenceandinsertionsequence.Then,theeffectofpropionateontheexpressionofPCmRNAinvitroculturebovinehepatocytewasquantitativelydeterminatedbycompetivePCR.Propionatewasaddedintotheculturemediaasvariousconcentrationof0mM,1.5mM,2.5mM,3.5mM,4.5mM,8.5mMand11.5Mm,culturedfor24h,andthentotalRNAwasextracted,reversetranscriptionwasdone,usingthesameprimertoamplifyobjectivegeneandcompetivegene.Results:PCmRNAlevelinhepatocyteareenhancedwithincreaseingofpropionateconcentration.ItisconcludedthatpropionatecouldinfluencePCmRNAlevelinlivercellofdairycow.Keyword:PCmRNAlevelcompetiveRT-PCRhepatocyteintron丙酮酸羟化酶(pyruvatecarboxylase,PC)位于肝细胞内,是糖异生途径的关键酶之一,在催化丙酮酸生成草酰乙酸过程中起着至关重要的作用。PC基因的表达量直接影响肝脏糖异生的能力,对调控机体的能量代谢,特别是维持反刍动物的能量平衡具有重要作用。丙酸盐是反刍动物肝糖异生的主要生糖先质,是反刍动物的主要能量来源。本试验采用定量PCR方法,检测了不同浓度丙酸钠对新生牛原代培养肝细胞PCmRNA水平的影响。为进一步研究与糖异生有关的能量代谢障碍性疾病奠定了基础。1材料与方法1.1材料RPMIMedium1640,购自Gibco公司;D-hanks、小牛血清自制;焦磷收稿日期:2003-12-20基金项目:国家自然科学基金资助项目(30230620)作者简介:徐闯(1979-),男,硕士。*通讯作者1酸二乙酯(DEPC),购自Sigma公司;反转录酶(AMV),OligdT,DNA聚合酶,PMD18-T载体,限制性内切酶EcoRI、HindIII、ApaI,T4DNA连接酶,均购于TaKaRa公司;总RNA提取TRIPURE试剂盒,购于Roche公司;质粒、DNA回收试剂盒,购于杭州维特洁生物技术公司;CollagenaseII,购于Gibco公司;PMD-GH质粒,由本室李家奎老师构建;RNA/DNAcalculator,PharmaciaBiotech公司。1.2引物设计根据GenBank中PC基因mRNA序列,设计1对引物,由上海生物工程有限公司合成。上游引物,5/-CCCCTGGAGCGTGTGTTCGACTAC-3/;下游引物,5/-GGATGCCGATGTAGCCCTGCAGGA-3/。扩增片段大小为385bp。1.3新生牛肝细胞单层培养模型的构建参照有关报道[1,2]。将未哺乳新生牛静动脉放血处死,无菌条件下采取肝后叶组织,去除肝表面结缔组织和肝内大血管,用D-hanks液冲洗2次,剪碎成1mm3左右组织块,再用D-hanks液洗涤2次,离心回收组织(注意:离心速度不要超过1000r/min),加入0.125%胶原酶II,37℃水浴40min(此期间轻微颠倒数次,最好在消化过程中吹打1次),加入等量含10%小牛血清的1640培养液终止消化,洗涤细胞2次(1200r/min,5min),去除胶原酶,分散细胞和组织,将悬液通过100目尼龙网滤器,收集细胞,充分分散细胞后计数。按每孔1×106个细胞接种于6孔板,于37℃、5%CO2培养箱中培养,每天换液,在倒置显微镜下观察细胞生长情况。培养4d后细胞完全贴壁即可进行试验。肝细胞为原代培养,不能传代,生长周期为7d左右。通过测定细胞培养液中白蛋白等确定其生物学活性。1.4PCcDNA的克隆测序1.4.1总RNA的提取按试剂盒说明操作。1.4.2cDNA合成及PCR扩增按试剂盒说明操作。PC基因的逆转录反应体系:总RNA5µl,Oligo(dT)50pmol,5×RTBuffer4µl,dNTPMixture20mMeach,RnaseInhibitor40U,AMV10U,加无菌H2O至20µl;反应条件:70℃变性5min,0℃退火5min,42℃逆转录90min,90℃AMV失活5min,0℃冷却5min。PC基因的PCR反应体系:Taq2.5U,10×PCRBuffer(Mg+)2.5µl,dNTPMixture10mMeach,cDNA2µl,primer(10µM)各1µl加无菌H2O至25µl;反应条件:94℃预变性5min;94℃变性45s,60℃退火45s,72℃延伸45s,30个循环;最后72℃延伸10min。1.4.3PCcDNA的克隆测序PCcDNA克隆,应用PMD18-T载体,按常规方法操作。克隆质粒作PCR鉴定和酶切鉴定,对阳性菌落提取质粒作测序分析。1.5PC基因竞争模板的构建提取牛肝脏基因组,用设计的特异性引物扩出PC基因的DNA序列,利用其中含有的一个内含子序列,再插入一段从PMD-GH质粒上酶切下的212碱基片段来构建竞争模板。1.5.1PMD-PCDNA质粒的构建肝组织基因组的提取,按试剂盒说明操作。PCR扩增条件同上。PMD-PCDNA基因克隆用PMD18-T载体,按常规方法操作。质粒作PCR鉴定和酶切鉴定,对阳性质粒作测序分析。1.5.2PMD-GH质粒和PMD-PCDNA质粒的酶切按试剂盒说明操作。用ApaI分别对PMD-GH质粒和PMD-PCDNA质粒进行单酶切,分别回收212bp的PMD-GH质粒(本实验室保存的猪生长激素cDNA质粒载体)酶切片段和PMD-PCDNA质粒酶切片段。1.5.3酶切片段的连接PMD-GH质粒酶切的212bp片段与PMD-PCDNA质粒酶切片段的连接,按试剂盒说明进行操作。用T4DNA连接酶连接GH片段与PMD-PCDNA片段。质粒作PCR鉴定和酶切鉴定,对阳性菌落提取质粒进行序列分析。对挑选出的PMD-PCDNA-GH质粒,用设计的特异性2引物扩增,回收目的片段,即可作为竞争DNA模板。1.6丙酸盐对体外原代培养新生牛肝细胞PCmRNA水平的影响取接种于6孔板培养4d生长良好的肝细胞,加入丙酸盐终浓度分别为0、1.5、2.5、3.5、4.5、8.5、11.5,每个浓度组作3个重复,培养24h后,倒掉培养液,加入Tripure试剂,每个重复分别提取总RNA,按试剂盒说明操作。1.6.1RNA定量采用PharmaciaBiotech公司的RNA/DNAcalculator测定RNA的浓度。1.6.2竞争模板浓度、循环数及RNA完整性的确定用ddH2O对竞争模板倍比稀释后,用特异性引物在同一体系里同时扩增PCmRNA和竞争模板,以电泳的结果来确定竞争模板的最佳浓度。循环数的确定,是根据RNA浓度最高一组的逆转录产物cDNA作模板进行PCR扩增,循环数由20~40个进行摸索,扩增控制在平台期之前[5],最终确定最佳循环数为35个。完整性测定,按参考文献进行[6]。1.6.3不同浓度丙酸盐对肝细胞PCmRNA水平的影响根据测定的RNA浓度调整总RNA的体积,使各组体系的RNA量相同,且每组均含相同量竞争模板。RT反应条件同上,PCR反应为35个循环,条件同上。RT-PCR反应后进行琼脂糖凝胶电泳,电泳图片用凝胶分析软件计算密度比例,进行统计学分析。2结果2.1PC基因的RT-PCR扩增、PC基因的克隆及其酶切和测序RT-PCR扩增出1条385bp片段(图1),大小与预期设计的相符。测序结果表明,基因重合率为99.5%,只有2个碱基发生突变即第90位碱基T突变为C,第93位碱基C突变为T(图2)。证明所获得的片段为PCcDNA片段。酶切的目的片段包括载体的多克隆位点序列。酶切鉴定用质粒多克隆位点的EcoRI和HindIII位点进行。cccctggagcgtgtgttcgactacagcgagtactgggagggggcccgggggctgtacgcggcctttgactgcacggccaccatgaagtccggtaactcggacgtgtatgagaacgagatcccagggggccagtacaccaacctgcacttccaggcgcacagcatggggctcggctccaagttcaaggaggtcaagaaggcctacgtggaggccaaccagatgctgggcgacctcatcaaggtgacgccctcctccaagatcgtgggggacctggcccagttcatggtgcagaacgggctgacccgagctgaggccgaagcgcaggcagaggagctgtccttcccccgctcggtggtggagttcctgcagggctacatcggcatcc图2PCmRNA测序结果阴影部分为引物序列,方框内为突变基因2.2PC基因组DNAPCR扩增、PCDNA质粒酶切和测序从基因组DNA中,扩增出1条约466bp的片段(图1),PCDNA质粒酶切结果(加上目的片段两边的多克隆位点)与该片段大小相符。测序结果表明,只有2个基因发生突变第108位碱基T突变为C,第338位碱基A突变为C,PC基因序列包含有一内含子,大小为81bp,位于上下游引物的中间位置(图3)。CCCCTGGAGCGTGTGTTCGACTACAGCGAGTACTGGGAGGGGGCCCGGGGGCTGTACGCGGCCTTTGACTGCACGGCCACCATGAAGTCTGGC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