临床检验标本采集规范!!

临床检验标本采集规范临床检验结果直接关系到患者诊断和治疗的准确性。标本的采集和运送直接关系到检验结果的正误，因此在标本采集、送检、保存等各个环节都要规范操作、严格控制，这是确保检验结果准确可靠的前提。•采集标本要选择最佳时间•采集标本要选择最具代表性•采集标本要满足最大要求•重视标本惟一性标志检验标本正确采集和运送的重要性临床检验血液标本原则上晨起空腹时采集，其结果准确可靠，因它避免了摄入成分和生理活动对检测指标的影响。比如需做血脂检查，在化验前24h要禁高脂饮食。特定时间采血因人体生物节律昼夜的周期变化，所以24h内不同时间所采集的标本其检测结果是不同的,如糖、激素及药物疗效监测等。尿常规采集晨尿，由于肾脏浓缩功能，易发现病理成分.采集标本要选择最佳时间急诊检验采血不受时间的限制，但在检验单上应注明采血时间和急诊字样，以便临床医生根据其特殊性综合分析检验报告。细菌培养应尽量争取在抗生素使用前采集标本；临床上疑为败血症、脓毒血症或其他血液感染的患者，需做血液细菌培养，采血宜在患者发冷、发热期间，越早越好，最好在抗菌治疗前，以正在发冷、发热时或发冷、发热前半小时为宜。采集标本要选择最具代表性由于患者标本采集不当，常导致阳性率降低，因此标本的采集应具有代表性，比如大便标本应采取新鲜标本，且选取异常成分的粪便，如含有黏液、脓、血等病变成分的标本取3～5g送检;应避免混有尿液、消毒剂及污水等杂物。如痰液也要求新鲜，一般检查以清晨第1口痰作标本最适宜，做细胞学检查则以上午9：00～10：00留痰为好。血标本采集时患者应采取坐位或仰卧位，还应防止压脉带时间过长等。采集标本要满足最大要求抗凝剂、防腐剂的正确应用：临床上很多检验项目涉及到抗凝剂、防腐剂的应用，如血沉检查，但由于抗凝剂比例不当造成血沉减慢的现象也常发生。防溶血、防血脂、防污染：溶血标本引起的血细胞计数、血细胞比容、电解质离子及一些酶类、尿素、肌酐、尿酸、血糖等项目的变化临床上经常碰到。脂血标本(高脂饮食或脂肪乳输注或胰腺炎)、被污染标本引起对实验吸光度的干扰，这些都应引起重视。标本运送应注意一些问题：首先标本要专人输送，除门诊患者自行采集的某些标本允许患者自行送外，其他情况原则上一律专人运送。其次送检标本保证安全，防止过度震荡，防止容器破损，防止污染，水分蒸发等。最后保证运送及时性，标本采集后立即送检，标本在室温放置时间直接影响检测结果的真实性。防止过失采集：不可利用输液、输血通道采集血液标本。除急诊抢救外应尽量避免在输液、输血的同时采集标本；如确需抽血要在另一侧肢体抽取。一般要求在输液、输血前或后1小时采集血液标本。重视标本惟一性标志标本采集容器标签上应注明送检科别,床号，患者姓名，与检验单上应相对应，防止张冠李戴。单上病案号，项目也应明确.血液标本常见溶血原因（１）注射器、针头或容器不干燥；（２）压脉带捆扎时间太久，淤血过久；（３）穿剌不畅，损伤组织过多；（４）抽血速度太慢或太快；（５）血液注入容器时未取下针头；（６）抗凝血混合时，振荡力量过大；（７）血液未完全凝固前进行振荡；（８）血液存放时间过长；（９）静脉采血时，为增加血流而挤压采血部位；（１０）血液标本在送检验或运输过程中，挤压或振动过大等。常用血液标本的采集量各种临床检验标本的正确采集方法检验标本的采集是保证检验结果准确的前提。因此，要求各临床科室医护人员、送检者及相关人员认真、严格的按以下方法操作取材。血液常规检查标本1.静脉血采集静脉血标本采集前病人应注意的问题:1）避免剧烈运动，一般主张抽血前24h内不做剧烈运动，清晨取血，住院病人可在起床前采血，匆忙赶到门诊的人应至少休息15分钟后采血。２）注意合理饮食。除了急诊或其它特殊原因外，一般主张在禁食12h后空腹取血，延长空腹时间(饥饿)或餐后血液的化学成分都会引起变化，饮酒实验亦有影响。３）药物的影响：很多的药物进入人体后可影响某些化验项目的结果，病人在化验前应尽可能停服对实验有干扰的药物。（一）血常规检验标本一般用EDTA-2K(EDTA-K2•2H2O)1.5～2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管,紫色帽）采血。采血注意事项：１.应按抗凝管刻度准确采静脉血至２ml。２.采血后立即上下颠倒混匀（5-10次，不可用强力震荡,以免造成溶血。）；３.采血后应尽快送检（为保证结果准确需显微镜观察形态的标本采血后应及时推片固定，因为超过2hWBC形态会发生改变）。(二）凝血检测（PT\APTT\TT\FIB）静脉采集抗凝血（真空负压系统采血），抗凝剂用枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L,抗凝剂:全血=0.2：1.8）抗凝血（枸橼酸钠抗凝管、蓝绿色帽）。采血注意事项：1.空腹采静脉血（餐后脂血影响检测结果，使因子Ⅶ活化，导致PT延长）；2.采血时患者应保持平静状态30min以上（剧烈活动可使因子Ⅷ活化，APTT明显缩短）；3.应单独1管血,必须准确采血至刻度线2ml；4.采血后应立即上下颠倒混匀5-10次，不可有凝块；5.采血后应尽快送检（必须2h内检测）。（三）血型与血交叉标本用EDTA-2K(EDTA-K2•2H2O)1.5-2.2mg/ml抗凝（EDTA抗凝管、紫色帽）采血.采血注意事项：1.按抗凝管刻度准确采静脉血,采血量分别为1ml和2ml；2.采血后立即上下颠倒混匀（5～10次）,不可有凝块,且不可用强力振荡，以免造成溶血。3.最好血型与血交叉各采1管血，便于标本保存。（四）红细胞沉降率（血沉，ESR）静脉采集枸橼酸钠（109mmol/L，即32.06g/L）抗凝血（枸橼酸钠抗凝管采血,黑色帽）。注意事项：1.单独采1管血,按抗凝管刻度准确采血至2ml（抗凝剂：全血=0.4：1.6）；2.采血后立即上下颠倒混合5-10次,不可用强力振荡；3.采血后应尽快送检（为保证结果准确,必须2h内检测）。（五）临床生化检验标本临床生化检验多用非抗凝血标本，应使用真空负压采血管。临床生化检验血标本采集主要注意事项是：1.多项化学检测一般可采1管血；2.采血量视检查项目多少不同而异，单管通常为4.0～5.0ml；3.多项检测同时采血时应按下列顺序采血：①血培养；②无添加剂管；③凝血管；④有添加剂管的顺序为：a．橼酸盐管；b．肝素管；c．EDTA管；d:氟化钠；附:真空采血管采集血液标本一览表真空采血管种类晨尿标本：留取清晨第一次尿，经长时间睡眠后，尿液趋向于浓缩和酸化，各种有型成份相对集中，且不受饮食、药物、运动等的影响，故最适合于尿常规检查。特别适合于住院患者和肾脏患者及泌尿系统疾病的动态观察和早期妊娠试验、本周氏蛋白测定等。随意尿标本：留取随时自然排尿标本，适用于尿液一般定性检查，为门诊急诊患者所常用。易受饮食、药物、运动等的影响，能使低浓度或临界浓度的病理性物质和有型成份漏检，并可出现饮食性糖尿。尿液常规检查标本２.尿液常规检查标本采集方法：（１）晨尿最好（安静状态下留取清晨第一次尿，浓缩，无其他影响）；（２）随机尿较常用（随时留尿，适用于门诊和急诊病人，结果易受多种因素影响）；（３）清洁尿（中段尿、导管尿、膀胱穿刺尿，用于病原微生物学培养、鉴定和药敏）；粪便常规检查标本1.一般应为新鲜的自然排出的粪便３～５ｇ，必要时可肛拭子采取；2.送检粪便应盛于洁净带盖的塑料盒中送检，要做好标记；3.要选取粪便的脓、血、黏液等异常成分进行检查；微生物学检验标本的正确采集﹑运送及处理，与细菌的培养﹑鉴定结果有十分密切的关系；对可疑烈性呼吸道传染病（如SARS﹑炭疽﹑肺鼠疫等）患者采集标本时，必须按国家规范化要求严格注意生物安全；医生﹑护士﹑检验人员均应重视微生物学检验标本正确采集的有关问题，并有责任向患者及其家属进行正确采集标本的宣传和指导。微生物学检验标本1．微生物学检验标本采集、运送、验收和处理注意事项（1）标本采集1）申请单标记必须清楚（姓名、性别、年龄、病例号、临床诊断、标本来源、采集时间、检查项目、抗生素应用情况等），以便实验室能够合理选择培养环境和培养基；2）尽量在抗生素应用前采集标本，以避免漏检和提高阳性检出率；3）标本采集应严格执行无菌操作；4）咽拭、肛拭、伤口拭子等拭子标本，应插入运送培养基送检；5）痰、尿液、伤口拭子等混有正常菌群的标本，不可放入肉汤培养基内送检；6）采集标本的容器必须经灭菌处理，但不可用消毒剂。（2）标本运送1）标本采集后应尽快送到微生物实验室；2）标本采集后在室温下超过2h未送达实验室，可视为不合格标本。（3）标本验收1）实验室只能接受和处理合格标本；2）实验室对不合格标本退回必须说明原因，并应及时与临床联系。2．微生物学检验标本采集和处理（1）尿液标本采集和处理通常留取晨起第一次尿液（此时尿液在膀胱内储存4h以上）；尿液采集后要及时送检，并保证2h内接种；尿液微生物学检验标本采集方法如下。;1）中段尿采集法：成年男性和女性分别用肥皂水清洗尿道口和外阴部，再用灭菌水冲洗尿道口，然后排尿弃去前段尿液，于带盖的无菌容器中留取中段尿液5～10ml2）导尿法：用导尿管导取10～15ml尿液，置灭菌容器中送检；长期留置导尿管者应更换新导尿管留尿；留置导尿时，用无菌消毒法消毒导尿管外部及导尿管口，用无菌注射器通过导尿管抽取尿液送检（不可采集尿液收集袋中的尿液送检）；（2）粪便标本采集和处理1）采集时间：①腹泻患者于急性期，尽量在用药前采集粪便；②伤寒患者于发病2天以后采集粪便；③怀疑霍乱时立即采集粪便送检。2)采集方法：①自然排便：取新鲜粪便的黏液、脓血、或絮状物等有意义成分，2-3g或1-2ml，盛无菌容器内或置于保存液或增菌液内送检；②直肠拭子：用于难以获得粪便或排便困难的患者和婴幼儿，标本采集后插入灭菌试管内送检。（3）痰及下呼吸道标本采集和处理1）自然咳痰法：①晨痰为佳；②先冷开水漱口清洁口腔和牙齿；③再用力咳出呼吸道深部的痰；④痰量不得少于1ml；⑤痰咳出困难时可先雾化吸入NaCl溶液（100g/L，加温到45℃）使痰容易咳出。2）小儿取痰法：用弯压舌板向后压舌，将拭子深入咽部，小儿因压舌板刺激引起咳嗽，喷出的肺或气管分泌物粘在拭子上可送检。（4）血液及骨髓培养标本1)抗生素治疗前，严格无菌静脉采血8～10ml（儿童3～5ml）；2）无菌注入专用培养瓶（成人（需氧瓶、厌氧瓶）、儿童）中送检；•一、采血时机•1.尽可能在抗菌药物使用前；•2.对已经使用抗菌药物的病人，最好在下次用药前采集；•3.寒战和发热初起时采血可提高培养阳性率，心内膜炎(持续性菌血症)例外；•4.怀疑血流感染时应尽早采血，不要强调体温超过39℃才抽血，而错过时机。•二、皮肤消毒及采血步骤•血培养为防止皮肤寄生菌污染，可使用消毒剂（碘酊或碘伏）对皮肤进行严格仔细的消毒处理，最大限度地减低皮肤污染。用做培养的血液均不应该在静脉或动脉的导管中抽取，除非静脉穿刺无法得到血液或用来评价与导管感染相关性指标。如果抽取了导管血，也应同时在其他部位穿刺获取非导管内静脉血液进行血培养。•（1）皮肤消毒严格执行以下三步法：•①70%酒精擦拭静脉穿刺部位30s以上；②1%~2%碘酊作用30s或10%碘伏60s，从穿刺点向外画圈消毒，至消毒区域直径达3cm以上；•③70%酒精脱碘：对碘过敏的患者，用70%酒精消毒60s，待酒精挥发干燥后采血。（2）培养瓶消毒程序：①70%酒精擦拭血培养瓶橡皮塞，作用60s；②用无菌纱布或无菌棉签清除橡皮塞子表面残余酒精。•（4）.血液接种到培养瓶后轻轻颠倒混匀，以防血液凝固；•四、运送•接种后的血培养瓶应立即送往微生物实验室。如不能立即送检，应放置室温下暂存，但时间不宜超过2小时。血标本接种到血培养瓶前或后，均不得放入冰箱冷藏或冷冻。（10）泌尿生殖道培养标本1）尿道分泌物：清洗尿道口采取尿道口溢出的脓性等分泌物，或用无菌拭子插入尿道2～4cm处轻轻转动后取出，置无菌试管中送检。2）阴道、宫颈分泌物：通过阴道扩张器，用灭菌拭子采取阴道口或宫颈管1～2cm处分泌物，置无菌试管中送检。3）前列腺液：清洗尿道口冲洗膀胱后用前列腺按摩法采取前列