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酵母DNA提取方法方法一：石英砂法1、5000rpm×5min收集过夜培养的菌体（5ml左右），于200μL裂解液(50mmol/LTris-HClpH8.0,180mmol/LEDTApH8.0,1%SDS,现配)中，加入3/10总体积石英砂在涡流混合器上振荡13min，每隔4min将离心管取出用力甩几下，然后65℃水浴10min。2、加入200μL5mol/LKAc，冰浴8min；3、12000rpm×5min转移上清至新的离心管中；4、加入3mol/LNaAc35μl，加入异丙醇200μL混匀后冰浴8min，12000rpm×5min收集沉淀；5、200μLTE溶解，加入RNase10μL，65℃水浴10min；6、加入200μL氯仿－异戊醇（24:1）,抽提；7、温柔地取上清150μL，加入20μL3mol/LNaAc及375μL无水乙醇，混匀后12000rpm×8min收集DNA；8、70%乙醇洗涤沉淀，吹干后TE溶解，-20℃保藏。方法二：蜗牛酶法1.接种于5ml的YEPD培养基中在25℃-28℃振荡培养12-16h。2.3500rpm离心5min沉淀细胞，用1ml的无菌水洗涤一次，再加0.5mlsolutionⅠ(1M山梨醇，0.1MEDTA,pH=7.5)重悬。3.转移细胞至1.5ml的离心管中，加入0.1蜗牛酶(30mg/ml)溶液，37℃保温30-60min,以获得原生质体。4.最大转速离心1min以沉淀细胞，用500ulsolutionⅡ(50mMTris-HCl,20mMEDTA,pH=7.4)溶液悬浮，然后加入50μl10%SDS,混合65℃保温30min。5.加入200μl5M醋酸钾，放于冰上30min。6.最大转速离心15min，转移上清液至新的离心管中，用等体积的异丙醇沉淀DNA。7.室温下放置5min，离心10min，用70%的乙醇洗涤一次，真空干燥，用50ulpH=7.4TE溶液溶解。方法三：蜗牛酶过夜处理法将酵母接种到YPD培养基中30℃过夜培养16～18h，离心收集1.5mL，用灭菌水洗涤两次；加入600μL裂解液，35μL蜗牛酶，37℃消化过夜；加入饱和酚450μL，氯仿-异戊醇(体积比24:1)150μL，轻轻颠倒混匀使溶液成为乳状，并保持10min，3000r/min离心10min；吸取上清液，用氯仿-异戊醇(体积比24:1)450μL再抽提1次，10000r/min离心5min；取上清加入异丙醇800μL，－20℃静置30min；10000r/min离心5min，沉淀物用70%乙醇洗两次，自然干燥后溶于30μLTE缓冲液；加入0.5μL10mg/mL的RNaseA，37℃温浴30min，自然冷却后保存。方法四：蜗牛酶反复冻融法收集过夜培养16～18h的菌体1.5mL，加入500μLPBS溶液重悬菌体，12000r/min离心2min，用PBS重洗一次；将沉淀溶于35μL的蜗牛酶溶液中，加入65μL的PBS，45℃作用2h，加100μL裂解液，－20℃冷冻，然后室温振荡溶解，反复3次；向悬浮液中加入150μL5mol/LKAc(pH8.9)轻轻混匀，然后10000r/min离心5min；取上清液，加入两倍体积的无水乙醇，轻轻混匀，室温放置5min；12000r/min离心10min，将沉淀溶解在100μLTE中；加入等体积的酚-氯仿-异戊醇(体积比25:24:1)，轻柔颠倒混匀，12000r/min离心5min，重复抽提1次；加1/10体积的3mol/L醋酸钠(pH5.2)，2.5倍体积的无水乙醇，－20℃放置30min；10000r/min离心5min，弃上清液，用70%乙醇溶液洗涤沉淀两次，室温干燥后用20μLTE溶解；加入0.5μL10mg/mL的RNaseA，37℃温浴30min，自然冷却后保存。方法五：溶解在100μLTE中；加入等体积的酚-氯仿-异戊醇(体积比25:24:1)，轻柔颠倒混匀，12000r/min离心5min，重复抽提1次；加1/10体积的3mol/L醋酸钠(pH5.2)，2.5倍体积的无水乙醇，－20℃放置30min；10000r/min离心5min，弃上清液，用70%乙醇溶液洗涤沉淀两次，室温干燥后用20μLTE溶解；加入0.5μL10mg/mL的RNaseA，37℃温浴30min，自然冷却后保存。方法六：1、配一个破菌缓冲液：TritonX-1002%（v/v）SDS1%（w/v）NaCl100mMTris-HCl（pH8.0）10mM2、把酵母细胞离心收集，加200ul的石英砂或玻璃珠，加入200μl的破菌液再加200μl的酚氯仿，涡旋一分钟，放在冰上一分钟，一共反复4次3、加入500μl的ddH2O，涡旋，离心，抽上清和等体积的酚氯仿混合4、涡旋，离心，抽上清和等体积的酚氯仿混合，重复4直到离心后两层之间没有蛋白出现5、抽上清加1ml的无水乙醇，放在-20度30min6、离心，抽上清，再用70%乙醇洗一次，真空干燥，用TE或ddH20溶解方法七：接种酵母到2.5ml酵母试管培养基中(YPD培养基)，30℃，培养16～18h；取1.5ml酵母培养液，室温下，1500×g离心5～10min收集菌体；菌体用灭菌水洗1次，1500×g离心5min；菌体用200μlSCED(1mol/L山梨醇、10mmol/L柠檬酸钠、10mmol/LEDTA、10mmol/LDTT二硫苏糖醇)溶液重悬，加入30μl10mg/ml溶菌酶(Lysozyme)37℃温浴1h；加入100μl2%SDS混匀，-20℃冰冻，然后室温震荡溶解，反复3次；向悬浮液中加入150μl5mol/LKAc(pH8.9)轻轻混匀，然后10000r/min离心5min；将上清转移到一新的1.5ml离心管中，加入2倍体积的乙醇，轻轻混匀，室温放置5min后12000r/min离心10min；除去上清，将沉淀溶解在300μlTE(10mmol/LTris-HCl，pH7.4，1mmol/LEDTA，pH8.0)中，加入6μlRNase(10mg/ml)，37℃温浴30min；加入饱和酚和氯仿各150μl充分混匀，然后10000r/min离心5min；转移上清到新的1.5ml离心管中，加入1/2体积的7.5mol/LNH4Ac(pH7.5)和等体积的异丙醇，-20℃放置20min后12000r/min离心10min；除去上清，加入300μl70%乙醇漂洗沉淀一次，10000r/min离心5min；风干除去乙醇，用20μlTE溶解酵母DNA。