DB33 T 780-2010 动物血吸虫病快速诊断技术规范

ICS65.020.30B41浙江省地方标准DB33DB33/T780—2010动物血吸虫病快速诊断技术规范Thenormforrapiddiagnostictechniquesofanimalschistosomiasis2010-03-17发布2010-04-17实施浙江省质量技术监督局发布DB33/T780—2010I前言本标准的附录A和附录B为资料性附录。本标准由浙江省畜牧兽医标准化技术委员会提出并归口。本标准起草单位：浙江省畜牧兽医局、浙江省农业科学院。本标准主要起草人：张雪娟、俞国乔、顾昀、卢福庄、陆国林、洪建伟、付媛、赵灵燕、石团员、倪柏锋。DB33/T780—20101动物血吸虫病快速诊断技术规范1范围本标准规定了动物血吸虫病金标免疫渗滤及三联斑点酶标诊断技术。本标准适用于牛、羊、猪、兔等家畜血吸虫病诊断、检疫、流行病学调查。锥虫病和肝片吸虫病也可参照三联斑点酶标诊断技术执行。2术语和定义下列术语和定义适用于本标准。2.1血吸虫病schistosomiasisjaponica由血吸虫寄生于动物和人体内所引起的疾病。在我国特指日本血吸虫病，是由日本血吸虫（Schistosomajaponcum）寄生于哺乳动物和人所引起的疾病。3金标免疫渗滤诊断技术3.1材料3.1.1反应板。3.1.2封闭液（甲液）、金标抗原（乙液）、洗涤液（丙液）。3.1.3玻璃毛细管（内径1mm）。3.1.4阴、阳性标准血清。3.1.5待检血纸或血清（采集和保存参见附录A）。3.1.6可调微量移液器及配套吸头。3.1.7塑料离心管（1.5mL）或玻璃试管(5mL～10mL)。3.1.8帐页纸打孔器(Φ0.55cm)。3.2待检样品处理3.2.1取洁净塑料离心管或玻璃试管，编上相应的待检血纸或血清号。3.2.2标准阴、阳血样处理：取标准阴、阳性血纸各1片(0.24cm2)，放入相应编号的塑料离心管或玻璃试管中，加入生理盐水0.5mL，室温浸泡30min，期间每隔10min摇动1次，即成标准阴、阳性血纸浸出液。或标准阴、阳性血清冻干品，则每支冻干品中加入0.8mL生理盐水溶解即可。3.2.3待检血样处理：用帐页纸打孔器裁取待检血纸1片(0.24cm2)，放入相应编号的塑料离心管或玻璃试管中，按照3.2.2的方法制备待检血纸浸出液。或待检血清稀释：吸取生理盐水0.79mL放入试管中，加入待检血清0.01mL，混合即可。3.3操作步骤3.3.1取反应板(板面有5个孔）编号，与待检血样编号对应。3.3.2用玻璃毛细管分别吸取标准阴、阳性血纸浸出液或80倍稀释的标准阴、阳性血清轻贴反应板孔中的硝酸纤维素膜0.5s(约1μl)，点在反应板同1个孔中，两点边缘间距2mm。3min～4min后往小孔中加甲液1滴(约0.05mL)；甲液渗入后，加乙液1滴(约0.05mL)；待乙液渗入后，加丙液1滴(约0.05mL)。如果点阳性血样处显红色斑点而点阴性血样处显黄色或浅粉红色斑点，说明该批试剂有效；否则说明该批试剂已失效。标准阴、阳性血样每天每批次只需做一次。DB33/T780—201023.3.3待检血样的点样参照3.3.2，从反应板左边第1孔开始点样，到第5孔为止。一次可连续点样3～5块反应板。3.3.4先往点样最早的反应板第1孔加甲液1滴，间隔5s～10s再加第2孔，依次类推。血样点后3min～4min加甲液。3.3.5待甲液渗入后，每孔加乙液1滴。3.3.6待乙液渗入后，每孔加丙液1滴。3.4结果判定10min内判定结果，红色斑点判为阳性(+)，浅粉红色或黄色斑点判为阴性(-)。4三联斑点酶标诊断技术4.1材料4.1.1三联酶标试剂(含有联检膜和试剂1～4)。4.1.2待检血纸或血清（采集和保存见附录A）。4.1.3可调微量移液器及与之配套的吸头。4.1.450mL烧杯。4.1.55mL或10mL试管。4.1.610mL带刻度吸管。4.1.7100mL量筒。4.1.8帐页纸打孔机(Φ0.55cm)。4.1.9直头眼科镊子。4.1.10吸水纸。4.1.11记号笔和铅笔。4.1.12蒸馏水。4.2待检样品处理4.2.1试剂1～4的配制参见附录B。4.2.2编号：用记号笔在试管上，用铅笔在联检膜的未点抗原一侧分别编写对应的待检血样编号。然后用剪刀将联检膜条剪下，放入相应号的试管中，每一试管加1.5mL试剂1。4.2.3标准阴、阳性血纸或血清的处理：吸取1.5mL试剂1分别加到装有标准阴、阳性血纸（0.24cm2/份）或标准阴、阳性血清(0.004mL)冻干品的青霉素瓶中，轻摇，每瓶加入联检膜1条。4.2.4加待检血样：用帐页纸打孔器裁取待检血纸1片（0.24cm2）或用可调移液器吸取0.004mL待检血清，放入含联检膜的相应编号的试管中，轻轻摇匀。4.3操作步骤4.3.1孵育：将加有待检样品或标准样品的试管轻摇片刻后，置37℃孵育50min～60min，期间摇动试管3次。4.3.2洗涤：用镊子将每支试管中膜夹出，放入盛有40mL的试剂1的烧杯中，轻轻摇动洗涤3次，每次间隔2min。4.3.3加兔抗牛羊IgG抗血清(试剂2)反应：将洗涤好的膜用镊子夹出，放在吸水纸上吸去膜表面水分后，放入盛有25mL试剂2的烧杯中，用镊子翻动膜，使其充分接触液体。然后，置37℃反应50min～60min，期间翻动膜1次。4.3.4洗涤：方法同4.3.2(若检测猪、兔血样，则4.3.3，4.3.4两步省略)。4.3.5加酶联葡萄球菌A蛋白溶液(试剂3)反应：用滤纸吸去膜表面水后，将膜放入盛有25mL试剂3的烧杯中，用镊子翻动膜，使膜浸在液体中。置37℃反应40min，期间翻动膜1次。4.3.6洗涤：方法同4.3.2。DB33/T780—201034.3.7加底物溶液(试剂4)显色反应：将已吸去表面水的膜放入盛有40mL试剂4的烧杯中，轻轻摇动烧杯，待标准阳性血纸或血清与膜有清晰棕色斑点出现后终止反应(1min～20min)。4.3.8终止反应：将烧杯中的反应液弃去，用蒸馏水充分洗涤至水清为止,即可判定结果。4.4结果判定目测判定结果，以膜编号端为右端，从左到右的圆斑依次为日本血吸虫病、伊氏锥虫病和肝片吸虫病；某一圆斑显棕色或黄色判为阳性(+)，浅黄色或无色判为阴性(-)。DB33/T780—20104附录A（资料性附录）待检血样的采集和保存A.1待检血纸的采集和保存A.1.1采集牛、猪、羊、兔无菌采血，流出的血滴滴在已编号的洁净滤纸条（1cm×5cm）另一端上，血纸吸血要均匀，阴凉处自然干燥后即成待检血纸。A.1.2保存干燥后的待检血纸置塑料袋内密封，置-20℃保存。A.2待检血清的采集和保存A.2.1采集牛、猪、羊、兔无菌采集静脉血，血液凝固析出血清后以3000rpm离心10min，吸出血清。A.2.2保存待检血清分装在1.5mL～2.0mL离心管中，置-20℃保存。DB33/T780—20105附录B（资料性附录）试剂1～4的配制以下所有试剂均为分析纯试剂，水为符合GB/T6682规定的二级水。B.1洗涤液(试剂1)的配制取NaCl5g，KCl0.1g，KH2PO40.1g，Na2HPO40.6g溶解在500mL生理盐水中，待试剂完全溶解后加入2.5mL吐温-20，混匀即成试剂1。用于血纸或血清、酶联葡萄球菌A蛋白和兔抗牛羊IgG抗血清或血纸的稀释液及三联酶标的洗涤液。B.2兔抗牛羊IgG抗血清稀释液(试剂2)(兔抗牛羊IgG抗血清)的配制将吸附有0.080mL兔抗牛羊IgG抗血清的自然干燥滤纸片(1cm×1cm)或直接吸取0.080mL兔抗牛羊IgG抗血清加入装有25mL试剂1的烧杯中摇匀后即成试剂2。B.3酶联SPA溶液(试剂3)的配制吸取5mL试剂1加到冻干辣根过氧化物酶联葡萄球菌A蛋白(效价1：80)中，待溶解后倒入烧杯中，再量取20mL试剂1，分3次洗涤冻干酶联葡萄球菌A蛋白容器，合并倒入烧杯中，混匀即成试剂3。B.4底物溶液(试剂4)的配制取NaCl0.24g，KCl0.008g，KH2PO40.008g,Na2HPO40.04g溶解在40mL生理盐水中，再加入3,3-二氨基联苯胺盐酸盐20mg，置37℃温箱避光溶解后即成试剂4，临用前加30%过氧化氢40μl，使其最终浓度为0.01%。