hj 478-2009 水质 多环芳烃的测定 液液萃取和固相萃取高效液相色谱法

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中华人民共和国国家环境保护标准HJ478—2009代替GB13198—91水质多环芳烃的测定液液萃取和固相萃取高效液相色谱法Waterquality-Determinationofpolycyclicaromatichydrocarbonsby liquid‐liquidextraction andsolid‐phaseextraction-Highperformanceliquidchromatography(发布稿)本电子版为发布稿。请以中国环境科学出版社出版的正式标准文本为准。2009-09-27发布2009-11-01实施环境保护部发布I目次前言…………………………………………………………………………………Ⅱ1适用范围……………………………………………………………………………12方法原理……………………………………………………………………………13试剂和材料…………………………………………………………………………14仪器和设备…………………………………………………………………………25样品………………………………………………………………………………36分析步骤……………………………………………………………………………37结果计算………………………………………………………………………68准确度和精密度…………………………………………………………………79质量控制和质量保证………………………………………………………………7附录A(规范性附录)方法的检出限和测定下限………………………………………………8附录B(资料性附录)方法的精密度和准确度………………………………………………10II前言为贯彻《中华人民共和国环境保护法》和《中华人民共和国水污染防治法》,保护环境,保障人体健康,规范水中多环芳烃的测定方法,制定本标准。本标准规定了测定水中十六种多环芳烃的液液萃取和固相萃取高效液相色谱法。本标准适用于饮用水、地下水、地表水、海水、工业废水及生活污水中十六种多环芳烃的测定。本标准是对《水质六种特定多环芳烃的测定高效液相色谱法》(GB13198—91)的修订。本标准首次发布于1991年,原标准起草单位为北京环境保护监测中心。本次为第一次修订。本次修订的主要内容有:——增加了方法的测定组分;——增加了固相萃取方法;——修改了萃取溶剂体系及净化的方法;——修改了高效液相色谱法的流动相配比;——修改了高效液相色谱法的检测条件;——增加了质量保证和质量控制的规定。自本标准实施之日起,原国家环境保护局1991年8月31日批准、发布的国家环境保护标准《水质六种特定多环芳烃的测定高效液相色谱法》(GB13198—91)废止。本标准由环境保护部科技标准司组织制订。本标准起草单位:沈阳市环境监测中心站。本标准环境保护部2009年9月27日批准。本标准自2009年11月1日起实施。本标准由环境保护部解释。1水质多环芳烃的测定液液萃取和固相萃取高效液相色谱法警告:部分多环芳烃属于强致癌物,操作时应按规定要求佩带防护器具,避免接触皮肤和衣服;标准溶液的配制应在通风柜内进行操作;检测后的残渣残液应做妥善的安全处理。1适用范围本标准规定了测定水中十六种多环芳烃的液液萃取和固相萃取高效液相色谱法。本标准适用于饮用水、地下水、地表水、海水、工业废水及生活污水中十六种多环芳烃的测定。十六种多环芳烃(PAHs)包括:萘、苊、二氢苊、芴、菲、蒽、荧蒽、芘、苯并[a]蒽、、苯并[b]荧蒽、苯并[k]荧蒽、苯并[a]芘、茚并[1,2,3-c,d]芘、二苯并[a,h]蒽、苯并[g,h,i]苝。液液萃取法适用于饮用水、地下水、地表水、工业废水及生活污水中多环芳烃的测定。当萃取样品体积为1L时,方法的检出限为0.002~0.016μg/L,测定下限为0.008~0.064μg/L,详见表A.1。萃取样品体积为2L,浓缩样品至0.1ml,苯并[a]芘的检出限为0.0004μg/L,测定下限为0.0016μg/L。固相萃取法适用于清洁水样中多环芳烃的测定。当富集样品的体积为10L时,方法的检出限为0.0004~0.0016μg/L,测定下限为0.0016~0.0064μg/L,详见表A.2。2方法原理2.1液液萃取法用正己烷或二氯甲烷萃取水中多环芳烃(PAHS),萃取液经硅胶或弗罗里硅土柱净化,用二氯甲烷和正己烷的混合溶剂洗脱,洗脱液浓缩后,用具有荧光/紫外检测器的高效液相色谱仪分离检测。2.2固相萃取法采用固相萃取技术富集水中多环芳烃(PAHS),用二氯甲烷洗脱,洗脱液浓缩后,用具有荧光/紫外检测器的高效液相色谱仪分离检测。3试剂和材料本标准所用试剂除另有注明外,均应为符合国家标准的分析纯化学试剂。除非另有说明,2本标准中所涉及的水均为不含有机物的蒸馏水。3.1乙腈(CH3CN):液相色谱纯。3.2甲醇(CH3OH):液相色谱纯。3.3二氯甲烷(CH2Cl2):液相色谱纯。3.4正己烷(C6H14):液相色谱纯。3.5硫代硫酸钠(Na2S2O3·5H2O)。3.6无水硫酸钠(Na2SO4):在400℃下烘烤2h,冷却后,贮于磨口玻璃瓶中密封保存。3.7氯化钠(NaCl):在400℃下烘烤2h,冷却后,贮于磨口玻璃瓶中密封保存。3.8标准溶液3.8.1多环芳烃标准贮备液:质量浓度为200mg/L含十六种多环芳烃的乙腈溶液,包括萘、苊、二氢苊、芴、菲、蒽、荧蒽、芘、、苯并[a]蒽、苯并[b]荧蒽、苯并[k]荧蒽、苯并[a]芘、茚并[1,2,3-c,d]芘、二苯并[a,h]蒽、苯并[g,h,i]苝。贮备液于4℃以下冷藏。3.8.2多环芳烃标准使用液:取1.0ml多环芳烃标准贮备液(3.8.1)于10ml容量瓶中,用乙腈(3.1)稀释至刻度,该溶液中含多环芳烃20.0mg/L,在4℃以下冷藏。3.8.3十氟联苯(Decafluorobiphenyl):纯度:99%,样品萃取前加入,用于跟踪样品前处理的回收率。3.8.4十氟联苯标准贮备溶液:称取十氟联苯(3.8.3)0.025g,准确到1mg,于25ml容量瓶中,用乙腈溶解并稀释至刻度,该溶液中含十氟联苯1000µg/ml。在4℃以下冷藏。3.8.5十氟联苯标准使用溶液:取1.0ml十氟联苯标准贮备溶液(3.8.4)于25ml容量瓶中,用乙腈稀释至刻度,该溶液中含十氟联苯40µg/ml。在4℃以下冷藏。3.9淋洗液:二氯甲烷/正己烷(1+1)混合溶液(V/V)。3.10硅胶柱:1000mg/6.0ml。3.11弗罗里硅土柱:1000mg/6.0ml。3.12固相萃取柱:C18,1000mg/6.0ml。或固相萃取圆盘等具有同等萃取性能的物品。3.13玻璃毛或玻璃纤维滤纸:在400℃加热1小时,冷却后,贮于磨口玻璃瓶中密封保存。3.14氮气,纯度≥99.999%,用于样品的干燥浓缩。4仪器和设备4.1液相色谱仪(HPLC):具有可调波长紫外检测器或荧光检测器和梯度洗脱功能。4.2色谱柱:填料为5μmODS,柱长25cm,内径4.6mm的反相色谱柱或其他性能相近的色谱柱。34.3采样瓶:1L或2L具磨口塞的棕色玻璃细口瓶。4.4分液漏斗:2000ml,玻璃活塞不涂润滑油。4.5浓缩装置:旋转蒸发装置或K-D浓缩器、浓缩仪等性能相当的设备。4.6液液萃取净化装置4.7自动固相萃取仪或固相萃取装置固相萃取装置由固相萃取柱、分液漏斗、抽滤瓶和泵组成。见图1。图1固相萃取装置(萃取部分)示意图4.8干燥柱:长250mm,内径10mm,玻璃活塞不涂润滑油的玻璃柱。在柱的下端,放入少量玻璃毛或玻璃纤维滤纸(3.13),加入10g无水硫酸钠。4.9一般实验室常用仪器。5样品5.1样品的采集:样品必须采集在预先洗净烘干的采样瓶(4.3)中,采样前不能用水样预洗采样瓶,以防止样品的沾染或吸附。采样瓶要完全注满,不留气泡。若水中有残余氯存在,要在每升水中加入80mg硫代硫酸钠(3.5)除氯。5.2样品的保存:样品采集后应避光于4℃以下冷藏,在7d内萃取,萃取后的样品应避光于4℃以下冷藏,在40d内分析完毕。6分析步骤6.1样品预处理6.1.1液液萃取6.1.1.1萃取:摇匀水样,量取1000ml水样(萃取所用水样体积根据水质情况可适当增减),倒入2000ml的分液漏斗中,加入50µl十氟联苯(3.8.5),加入30g氯化钠(3.7),再加入50ml二氯甲烷(3.3)或正己烷(3.4),振摇5min,静置分层,收集有机相,放入250ml接收瓶中,重复萃取两遍,合并有机相,加入无水硫酸钠至有流动的无水硫酸钠存在。放置30min,脱水干燥。6.1.1.2浓缩:用浓缩装置(4.5)浓缩至1ml,待净化。如萃取液为二氯甲烷,浓缩至1ml,加入适量正已烷至5ml,重复此浓缩过程3次,昀后浓缩至1ml,待净化。6.1.1.3净化饮用水和地下水的萃取液可不经过柱净化,转换溶剂至0.5ml直接进行HPLC分析。地表水和其他萃取液的净化:用1g硅胶柱(3.10)或弗罗里硅土柱(3.11)作为净化柱,4将其固定在液液萃取净化装置(4.6)上。先用4ml淋洗液冲洗净化柱,再用10ml正己烷平衡净化柱(当2ml正己烷流过净化柱后,关闭活塞,使正己烷在柱中停留5min)。将浓缩后的样品溶液加到柱上,再用约3ml正己烷分3次洗涤装样品的容器,将洗涤液一并加到柱上,弃去流出的溶剂。被测定的样品吸附于柱上,用10ml二氯甲烷/正己烷(1+1)洗涤吸附有样品的净化柱,收集洗脱液于浓缩瓶中(当2ml洗脱液流过净化柱后关闭活塞,让洗脱液在柱中停留5min)。浓缩至0.5~1.0ml,加入3ml乙腈,再浓缩至0.5ml以下,昀后准确定容到0.5ml待测。注1:在萃取过程中出现乳化现象时,可采用搅动、离心、用玻璃棉过滤等方法破乳,也可采用冷冻的方法破乳。注2:在样品分析时,若预处理过程中溶剂转换不完全(即有残存正己烷或二氯甲烷),会出现保留时间漂移、峰变宽或双峰的现象。6.1.2固相萃取6.1.2.1将固相萃取C18柱(3.12)安装在自动固相萃取仪(4.7)上,或按图1连接好固相萃取装置。6.1.2.2活化柱子:先用10ml二氯甲烷(3.3)预洗C18柱,使溶剂流净。接着用10ml甲醇(3.2)分两次活化C18柱,再用10ml水分两次活化C18柱,在活化过程中,不要让柱子流干。6.1.2.3样品的富集:在1000ml水样(富集所用水样体积根据水质情况可适当增减)中加入5g氯化钠(3.7)和10ml甲醇,加入50μl十氟联苯(3.8.5),混合均匀后以5ml/min的流速流过已活化好的C18柱。6.1.2.4干燥:用10ml水冲洗C18柱后,真空抽滤10min或用高纯氮气吹C18柱10min,使柱干燥。6.1.2.5洗脱:用5ml二氯甲烷洗提浸泡C18柱,停留5min后,再用5ml二氯甲烷以2ml/min的速度洗脱样品,收集洗脱液。用2ml二氯甲烷洗样品瓶,并入洗脱液。6.1.2.6脱水:先用10ml二氯甲烷预洗干燥柱(4.8),加入洗脱液后,再加2ml二氯甲烷洗柱,用浓缩瓶收集流出液。浓缩至0.5~1.0ml,加入3ml乙腈,再浓缩至0.5ml以下,昀后准确定容到0.5ml待测。6.2色谱条件6.2.1色谱条件Ⅰ梯度洗脱程序:65%乙腈+35%水,保持27min;以2.5%乙腈/min的增量至100%乙腈,保持至出峰完毕。5流动相流量:1.2ml/min。6.2.2色谱条件Ⅱ梯度洗脱程序:80%甲醇+20%水,保持20min;以1.2%甲醇/min的增量至95%甲醇+5%水,保持至出峰完毕。流动相流量:1.0ml/min。6.2.3检测器紫外检测器的波长:254nm、220nm和295nm荧光检测器的波长:激发波长λex:280nm,发射波长λem:340nm,20min后λex:300nm,λem:400nm、430nm和500nm。十六种多环芳烃在紫外检测器上对应的昀大吸收波长及在荧光检测器特定的条件下昀佳的激发和发射波长见表1。表1用紫外和荧光检测器检测多环芳烃时对应的波长单位: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