SNT 2850-2011 病毒性出血性败血症检疫技术规范

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书书书中华人民共和国出入境检验检疫行业标准犛犖/犜2850—2011病毒性出血性败血症检疫技术规范犙狌犪狉犪狀狋犻狀犲狆狉狅狋狅犮狅犾犳狅狉狏犻狉犪犾犺犪犲犿狅狉狉犺犪犵犻犮狊犲狆狋犻犮犪犲犿犻犪(犞犎犛)20110225发布20110701实施中华人民共和国国家质量监督检验检疫总局发布书书书前  言  本标准按照GB/T1.1—2009给出的规则起草。本标准参考了世界动物卫生组织(OIE)《水生动物病诊断手册2009版》第2.3.9章中病毒性出血性败血症的方法。本标准由国家认证认可监督管理委员会提出并归口。本标准起草单位:中华人民共和国深圳出入境检验检疫局、中华人民共和国北京出入境检验检疫局、中华人民共和国江苏出入境检验检疫局。本标准主要起草人:高隆英、张利峰、段宏安、史秀杰、徐晔、江育林。Ⅰ犛犖/犜2850—2011病毒性出血性败血症检疫技术规范1 范围本标准规定了病毒性出血性败血症病毒(viralhaemorrhagicsepticaemiavirus,VHSV)的检测,经细胞分离到病毒后,用间接荧光抗体试验(IFAT)、酶联免疫吸附试验(ELISA)、逆转录聚合酶链式反应(RTPCR)及测序等鉴定的检疫规范。本标准适用于鱼类病毒性出血性败血症的检疫诊断和流行病学调查。2 规范性引用文件下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。GB/T6682 分析实验室用水规格和试验方法GB/T18088 出入境动物检疫采样3 缩略语下列缩略语适用于本文件。BF2:蓝鳃太阳鱼细胞系CPE(cytopathiceffect):细胞病变效应DEPC:焦碳酸二乙酯dNTP(deoxyribonucleosidetriphosphate):脱氧核糖核苷三磷酸EDTA(ethylenediaminetetraaceticacid):乙二胺四乙酸EPC:鲤鱼上皮瘤细胞系FCS(fetalcalfserum):胎牛血清HEPES:犖2羟乙基哌嗪犖’2乙磺酸RTG2:虹鳟鱼性腺细胞系RTPCR(reversetranscriptionpolymerasechainreaction):逆转录聚合酶链式反应犜犪狇酶(犜犪狇DNApolymerase):犜犪狇DNA聚合酶Tris[tris(hydroxymethyl)aminomethane]:三(羟甲基)氨基甲烷VHSV(ViralHaemorrhagicSepticaemiavirus):病毒性出血性败血症病毒4 仪器和设备4.1 超净工作台。4.2 生化培养箱。4.3 荧光倒置显微镜。4.4 冷冻离心机。4.5 -80℃超低温冰箱。1犛犖/犜2850—20114.6 -20℃普通冰箱。4.7 磁力搅拌器。4.8 真空高压过滤器。4.9 PCR仪。4.10 微量移液器及吸头。4.11 电泳仪。4.12 凝胶成像仪或紫外透射仪。4.13 酶标仪。4.14 剪刀、镊子、离心管、PCR管和细胞培养器皿等耗材。5 试剂和材料5.1 水:应符合GB/T6682中一级水的规格,用于RTPCR时要用DEPC处理,除去RNA酶。5.2 VHSV参考株:由国家质量监督检验检疫总局指定提供。5.3 抗VHSV的Ig(包被用):由国家质量监督检验检疫总局指定单位提供。5.4 抗VHSV的抗血清和包被用Ig不是来源于同一种动物:由国家质量监督检验检疫总局指定单位提供。5.5 FITC(fluoresceinisothiocyanate):标记的抗抗体:是抗5.4中所指动物的抗体。5.6 辣根过氧化物酶标记的抗抗体:是抗5.4中所指动物抗体。5.7 细胞生长液:含10%胎牛血清的199细胞培养液(含Earle’s平衡盐的199培养基配制)(配制见附录A)。5.8 细胞维持液:含2%胎牛血清的199细胞培养液(含Earle’s平衡盐的199培养基配制)。5.9 无水乙醇,分析纯,使用前预冷到-20℃。5.10 反转录酶AMV:-20℃保存,避免温度剧烈变化。5.11 RNA酶抑制剂:-20℃保存,避免温度剧烈变化。5.12 犜犪狇酶:-20℃保存,避免温度剧烈变化。5.13 DNAMarker2000。5.14 琼脂糖。5.15 引物:正向引物F:5’ATGGAAGGAGGAATTCGTGAAGCG3’反向引物R:5’GCGGTGAAGTGCTGCAGTTCCC3’该引物可以扩增VHS病毒目前已知的4个基因型所有毒株的N基因的505个碱基片段(序列参见附录B)。5.16 丙酮:分析纯。5.17 0.05%吐温80。5.18 pH8.5甘油生理盐水。5.19 5%脱脂奶。6 采样对有临床症状的鱼(参见附录C),如果是体长<4cm的鱼苗取整条鱼,4cm≤体长≤6cm的鱼苗取内脏(包括肾);体长>6cm的鱼则取脑、肝、肾、脾。而对无症状的鱼的采样数量按GB18088的规定采样。同样要取肾、脾和脑组织,成熟雌鱼还需取卵巢液。2犛犖/犜2850—20117 操作步骤7.1 细胞培养分离犞犎犛犞7.1.1 采用的细胞系BF2、RTG2、EPC。BF2细胞系对淡水分离到的VHSV是高度敏感的。建议同时采用包括BF2在内的两种细胞来培养分离病毒。7.1.2 样品处理将样品置研钵中加入石英砂研磨,随后按1∶10的比例将研磨好的组织样悬浮于含有1000IU/mL青霉素和1000μg/mL链霉素的培养液中,于25℃下悬浮2h~4h或4℃下孵育过夜。5000犵离心15min,收集上清液。7.1.3 接种细胞单层把已按1∶10制备的组织匀浆上清液再作二次10倍稀释(用生长液或维持液稀释均可),即达到1∶100和1∶1000组织上清稀释液,接种到生长24h内的长满细胞单层的96孔板。每个样品至少接种2孔,每孔加0.1mL。试验中要有2孔阳性对照(接种VHSV参考株)和2孔空白对照(未接种病毒的细胞)。后置于15℃~18℃培养。每天用显微镜观察CPE,连续观察7d。如果在7d内没有CPE出现,则还要用敏感细胞再盲传一次。传代程序如下:将接种上述组织上清液的细胞培养物7d后冻融收集,5000犵,4℃离心15min,离心后取上清并作1∶10和1∶100稀释,接种到同种的长满单层的新鲜细胞中,再培养观察7d。接种了被检匀浆上清稀释液的细胞板或者盲传后的细胞板中出现CPE,应立即取病毒悬液用下述方法进行鉴定。如果仅有阳性对照出现CPE,样品经过接种细胞和盲传后均没有CPE出现,则结果判为阴性。如果阳性对照也未出现CPE,则应换用新一批敏感细胞重新进行细胞分离培养。7.2 病毒鉴定7.2.1 间接荧光抗体试验7.2.1.1 在2cm2的塑料细胞培养板孔中或盖玻片上制备细胞单层,通常在22℃孵育24h即可达到80%长满单层细胞。7.2.1.2 当准备好用作感染的细胞单层后,在传入细胞的当天或第2天,直接将10倍稀释的待鉴定的病毒悬液接种到细胞培养孔。每个待鉴定的病毒分离物接种6孔。7.2.1.3 按7.2.1.2同样方法稀释并接种VHSV的2孔作阳性对照,其细胞培养液中病毒滴度要达到5000PFU/mL~10000PFU/mL。另2孔只加细胞培养液为阴性对照7.2.1.4 在15℃培养24h。7.2.1.5 孵育结束后,吸出细胞培养液,用0.01mol/LpH7.2的PBS漂洗1次,然后用冷的固定液(见附录A)快速漂洗3次。7.2.1.6 每2cm2细胞单层用0.5mL固定液固定15min。7.2.1.7 使细胞单层在空气中干燥至少30min,立即继续下步实验或置于-20℃保存。7.2.1.8 用PBST(见附录A)清洗4次。7.2.1.9 用含0.05%吐温80,0.01mol/LpH7.2的PBST把抗VHSV的抗血清按说明书稀释到工3犛犖/犜2850—2011作浓度。7.2.1.10 加入抗血清溶液,每2cm2孔加0.25mL。将加入抗血清的细胞单层在37℃湿盒内反应1h。7.2.1.11 用上述PBST缓冲液洗4次。7.2.1.12 用FITC标记的抗抗体稀释到工作浓度,每2cm2孔加0.25mL。在37℃下反应1h。该抗抗体应是对应抗前面所用抗VHSV免疫球蛋白的。7.2.1.13 用PBST缓冲液漂洗4次。7.2.1.14 立即观察在塑料板上的处理过的细胞单层,盖玻片要用90%,pH8.5的甘油生理盐水封片,显微镜观察。7.2.1.15 用10倍目镜和较大孔径的20倍~40倍物镜,在荧光显微镜下观察。应在阳性和阴性样品中看得到预期的结果后才能进行其他样品的观察。阳性反应通常在细胞层上有特异的黄绿色荧光点,阴性样品只有微弱的绿色背景。7.2.2 酶联免疫吸附试验7.2.2.1 用包被稀释液(见附录A)将纯化的抗VHSV的免疫球蛋白(Ig)稀释到工作浓度,每孔加0.2mL。包被ELISA微量板。在4℃孵育过夜或者37℃反应1.5h~2h。7.2.2.2 用含0.05%吐温20的0.01mol/L的PBST冲洗4次。7.2.2.3 用5%脱脂奶(200μL/孔)封闭,37℃孵育1h。7.2.2.4 用上述PBST冲洗4次。7.2.2.5 加2%的无离子洗涤剂(TritonX100或NonidetP40)到待检的病毒悬液中做2倍或4倍系列稀释。7.2.2.6 每孔加入100μL经2倍或4倍系列稀释的待检病毒,每个样品2孔。另将已知标准VHS病毒(阳性对照)、正常组织样品(阴性对照)和细胞培养液(空白对照)也各加2孔。于37℃下和包被好的抗VHSV抗体反应1h。7.2.2.7 用上述PBST洗4次。7.2.2.8 每孔加0.1mL用细胞培养液稀释到工作浓度的抗VHS病毒血清。该抗血清不能和包被用的抗体来源于相同的的动物。37℃孵育1h。7.2.2.9 用上述PBST洗4次。7.2.2.10 每孔加0.1mL0.1%的H2O2(用双蒸水稀释)。37℃反应15min以除掉非特异性的过氧化物酶。倒出孔内液体,用PBST洗2次。7.2.2.11 每孔加入0.1mL用细胞培养液稀释到工作浓度的辣根过氧化物酶标抗抗体。该抗抗体应是对应抗7.2.2.8所用的抗体。37℃反应1.5h~2h。7.2.2.12 用PBST冲洗4次。加入底物OPD溶液(见A.12)(也可以用其他底物和显色剂,如:TMB四甲基联苯胺,及相应的检测条件)。当阳性对照出现明显棕黄色,阴性对照无色时,立即每孔加入0.2mL浓度为2mol/L的硫酸终止反应,尽快用酶标仪测量各孔在波长=490nm时的光吸收值(OD值)。7.2.2.13 结果判定:以样品孔的OD值(P)与阴性对照的OD值(N)之比不小于2.1(即P/N≥2.1)定为阳性。7.2.3 逆转录聚合酶链反应7.2.3.1 犚犖犃抽提将待检的病毒悬液450μL加入1.5mL的离心管中,然后加入450μLCTAB溶液(见A.1)用旋4犛犖/犜2850—2011涡振荡器将其混匀,25℃作用2.5h。加入600μL抽提液Ⅱ(酚/三氯甲烷/异戊醇)(见附录A),充分混合不少于30s。14000犵离心5min,取上层水相(约800μL)。再加入700μL抽提液Ⅰ(三氯甲烷/异戊醇)(见附录A),充分混合不少于30s。14000犵离心5min,取上层水相(约600μL)。再加入-20℃预冷的1.5倍体积的无水乙醇(约900μL),充分混匀后,-20℃8h以上沉淀核酸。14000犵离心30min,小心弃去上清液,放入干燥箱干燥,干燥后加入11μL经DEPC处理过的水,溶解后作为RTPCR模板溶液。7.2.3.2 变性和退火在PCR管中加入10μL模板溶液和2.5μL引物VHSVR,加2.5μL水使总体积为15μL。置于70℃反应5min。立即冰浴。7.2.3.3 犮犇犖犃合成在7.2.3.2反应管中继续加入:5μL的5倍逆转录酶浓缩缓冲液(见附录A)、2μ

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