SNT 1166-2010 水泡性口炎检疫技术规范

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书书书中华人民共和国出入境检验检疫行业标准犛犖/犜1166—2010代替SN/T1166.1—2002,SN/T1166.2—2002,SN/T1166.3—2006水泡性口炎检疫技术规范犙狌犪狉犪狀狋犻狀犲狆狉狅狋狅犮狅犾犳狅狉狏犲狊犻犮狌犾犪狉狊狋狅犿犪狋犻狋犻狊20101101发布20110501实施中华人民共和国国家质量监督检验检疫总局发布书书书前  言  本标准按照GB/T1.1—2009给出的规则起草。本标准代替SN/T1166.1—2002《水泡性口炎补体结合试验操作规程》、SN/T1166.2—2002《水泡性口炎微量血清中和试验操作规程》和SN/T1166.3—2006《水泡性口炎逆转录聚合酶链反应操作规程》。 本标准与SN/T1166.1—2002、SN/T1166.2—2002和SN/T1166.3—2006相比,主要技术变化如下:———增加了水泡性口炎的病毒分离及鉴定;———增加了荧光反转录聚合酶链反应;———增加了竞争酶联免疫吸附试验。本标准由国家认证认可监督管理委员会提出并归口。本标准起草单位:中华人民共和国深圳出入境检验检疫局、中华人民共和国云南出入境检验检疫局。本标准主要起草人:花群义、阮周曦、杨俊兴、杨云庆、秦智锋、吕建强、曾少灵、林庆燕、宗卉、张彩虹、周晓黎、董俊。本标准所代替标准的历次版本发布情况为:———SN/T1166.1—2002;———SN/T1166.2—2002;———SN/T1166.3—2006。Ⅰ犛犖/犜1166—2010水泡性口炎检疫技术规范1 范围本标准规定了动物水泡性口炎的病毒分离及鉴定、反转录聚合酶链反应、荧光反转录聚合酶链反应、中和试验、竞争酶联免疫吸附试验的技术要求。本标准适用于动物水泡性口炎的检验检疫。2 规范性引用文件下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件,仅注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件,其最新版本(包括所有的修改单)适用于本文件。GB/T18088 出入境动物检疫采样3 缩略语以下缩略语适用于本文件。BHK21:仓鼠肾细胞BLP:乳糖蛋白胨缓冲肉汤CPE:致细胞病变作用Ct值:每个反应管内的荧光信号达到设定的阈值时所经历的循环数cELISA:竞争酶联免疫吸附试验DEPC:焦碳酸二乙酯McAb:单克隆抗体OD值:光密度值PI:抑制百分比TCID50:半数组织培养感染量Vero:非洲绿猴肾细胞VSV:水泡性口炎病毒VSVIND:水泡性口炎病毒印地安那型VSVNJ:水泡性口炎病毒新泽西型4 病毒分离与鉴定4.1 病毒分离4.1.1 样品的采集:按GB/T18088进行。主要采集动物口、蹄冠上或乳头上的水泡上皮组织。采集后立即冷藏送检或置碳酸缓冲甘油(配方见附录A)中低温保藏。采集到的水泡液置灭菌瓶中,冷藏送检或低温保藏。若从冻肉中采样,可采淋巴结或组织;采集的精液样品应不少于1mL,冻精样品每头每批次取样3管~5管;无症状或无水泡的活动物采集抗凝全血,胚胎及其冲洗液。4.1.2 样品的处理:将采集到的上皮、淋巴结或组织样品,经研磨后用0.01mol/LpH7.2的PBS(配1犛犖/犜1166—2010制见附录A)配制成20%的悬液。精液用乳糖蛋白胨缓冲肉汤(BLP,配制见附录A)作1∶5稀释后,经8000r/min4℃离心30min,弃上清液,并弃去浮游脂肪,再用BLP作1∶5稀释成悬液;水泡液、胚胎冲洗液无需处理,全血用BLP作1∶5稀释后,直接用于病毒的分离或鉴定。4.1.3 接种细胞:澄清组织悬液或水泡液与抗生素(含青霉素2000IU/mL、链霉素2000μg/mL)4℃作用30min,接种于BHK21或Vero细胞单层,37℃5%二氧化碳培养箱吸附1h,弃去接种物,用细胞培养液洗涤三次,然后加入维持液,置于33℃~35℃5%二氧化碳培养箱中继续培养。4.2 病毒鉴定采用反转录聚合酶链反应和荧光反转录聚合酶链反应进行病毒分离物的鉴定。接种后2d~3d出现CPE,需进行鉴定。如无CPE,则盲传三代,仍无CPE,则判为VSV阴性。5 反转录聚合酶链反应5.1 试剂和材料5.1.1 水泡性口炎病毒标准株新泽西型(NJ)和印第安那型(IND)标准病毒株。5.1.2 犜犪狇酶-20℃保存,避免反复冻融或温度剧烈变化。5.1.3 逆转录酶AMV-20℃保存,避免反复冻融或温度剧烈变化。5.1.4 RNA抑制剂(RNasin)-20℃保存,避免反复冻融或温度剧烈变化。5.1.5 dNTP(含dCTP、dGTP、dATP、dTTP各10mmol/L)5.1.6 引物5.1.6.1 选用水泡性口炎病毒L蛋白基因较保守的序列为PCR扩增区。采用半套式RTPCR方法,半套式引物分别根据NJ株和IND株扩增区的碱基差别设计。外侧引物Ⅰ(P1):5’AAGGCTCTCTGTTTCCGGATCTGG3’;外侧引物Ⅱ(P2):5’TGATTCAATATAATTATTTTGGGAC3’;NJ半套式引物(P3):5’TGTTCTGGTGTGCAAACCAGGTATC3’;IND半套式引物(P4):5’AGTAGAACTGTGCAAGCCCGGTATC3’。5.1.6.2 用DEPC水将引物配制成浓度为25pmol/μL。5.1.7 三氯甲烷(氯仿)。5.1.8 75%乙醇:用新开启的无水乙醇和DEPC水配制,-20℃预冷。5.1.9 异戊醇:使用前预冷到-20℃。5.1.10 变性液、5倍AMV逆转录酶浓缩缓冲液、犜犪狇酶用10倍浓缩缓冲液、TBE电泳缓冲液、EB核酸染色液、上样缓冲液、DEPC处理水等。配制方法见附录A。5.2 器材和设备PCR扩增仪、电泳仪、微量移液器及吸头、凝胶图像分析仪、恒温培养箱、普通冰箱和低温冰箱、电动匀浆器或组织研磨器、离心机和离心管等。5.3 操作方法5.3.1 被检样品的采集和处理5.3.1.1 被检样品的采集:样品主要采集动物口、蹄冠上或乳头上的水泡上皮组织,采集后立即冷藏送2犛犖/犜1166—2010检或置缓冲甘油(用0.01mol/LpH7.2的PBS配制的50%的甘油溶液)中低温保藏;采集到的水泡液置灭菌瓶中,冷藏送检或低温保藏;若从冻肉中采样,可采集淋巴结或组织;无症状或无水泡的活动物采集抗凝全血。5.3.1.2 被检样品的处理:将采集到的上皮、淋巴结或组织样品,经研磨后用0.01mol/LpH7.2的PBS配制成20%的悬液。全血、胚胎及其冲洗液、细胞培养物无需处理;取450μL样品悬液放入1.5mL的离心管,再加入450μL变性液并混匀,旋涡振荡混合20s,冰浴15min。5.3.2 对照样品制备和处理5.3.2.1 阳性对照样品制备:将水泡性口炎病毒NJ型和IND型分别接种BHK21或Vero细胞单层,37℃吸附1h后加入维持液,置5%二氧化碳培养箱37℃培养,逐日观察。待CPE达75%以上,冻融两次,收获细胞培养病毒悬液,分装成1mL小瓶,置-70℃保存备用。5.3.2.2 阴性对照样品制备:制备BHK21或Vero细胞单层,弃去细胞培养液,加入维持液,置5%二氧化碳培养箱37℃培养3d,冻融两次,收获细胞悬液,分装成1mL小瓶,置-70℃保存备用;或采集相同动物的组织样品作为阴性对照样品。5.3.2.3 对照样品的处理:取450μL阳性和阴性对照样品细胞悬液放入1.5mL的离心管,再加入450μL变性液并混匀,旋涡振荡混合20s,冰浴15min。5.3.3 犚犖犃提取5.3.3.1 取250μL处理后的样品置1.5mLeppendorf管中,作好标记,同时设立阳性样品、阴性样品对照,加入3倍体积Trizol,振荡混合20s,静置5min。5.3.3.2 加入200μL三氯甲烷,振荡混合20s,静置5min;4℃12000r/min离心15min,取上清液置另一个标记好的1.5mLeppendorf管中,加入等体积异丙醇,-20℃静置15min。5.3.3.3 4℃12000r/min离心15min,轻轻弃上清液,加1mLDEPC水配制的75%乙醇。5.3.3.4 4℃12000r/min离心15min,小心弃去乙醇,倒置滤纸上,烘干,加20μLDEPC水溶解,立即进行cDNA的合成或-80℃保存备用。5.3.3.5 RNA提取也可采用等效的商品化病毒RNA提取试剂盒制备RNA。5.3.4 反转录合成犮犇犖犃在PCR管中加入10μL反转录模板(样品RNA)、1μL引物P2、5μL5倍逆转录酶浓缩缓冲液、2μLdNTP、0.5μLRNA酶抑制剂(20U)、1μL逆转录酶AMV(10U)和0.5μL水,总体积为20μL。置于42℃反转录45min,立即冰浴,用作PCR模板。5.3.5 犘犆犚扩增犇犖犃5.3.5.1 50μ犔犘犆犚反应液组成10×犜犪狇酶缓冲液         5μL氯化镁(MgCl2)(25mmol/L)4μLdNTPs(2.5mmol/L)4μL引物P11μL引物P21μL犜犪狇酶(5U)1μLcDNA模板5μLDEPC水29μL3犛犖/犜1166—20105.3.5.2 犘犆犚循环参数将PCR反应管置于PCR扩增仪。94℃5min;94℃45s、55℃45s、72℃30s,40次循环,然后72℃7min,最后4℃保存。5.3.6 犘犆犚产物琼脂糖电泳用TBE电泳缓冲液配制2%的琼脂糖(含0.5μg/mLEB)平板。将平板放入水平电泳槽,使电泳缓冲液刚好淹没胶面。将8μL样品和2μL样品缓冲液混匀后加入样品孔。在电泳时设立DNA标准分子量作对照,推荐使用pUC19DNA/犕狊狆Ⅰ(犎狆犪Ⅱ)。5V/cm电泳约30min,当溴酚蓝到达底部时停止。在紫外灯下观察有无227bp的DNA片段扩增产物条带。5.3.7 半套式犘犆犚定型5.3.7.1 PCR产物琼脂糖凝胶电泳后,如果看不到227bp的DNA条带,取5μL产物做模板;如果电泳后能看到227bp的DNA带,只是要求进行定型,则需将产物按1∶1000稀释后,取5μL做模板。5.3.7.2 取两只离心管,一管作新泽西型(NJ):另一管作印第安那型(IND):a) 新泽西型(NJ)定型的PCR反应管中依次分别加入以下试剂,配制50μLPCR反应体系:模板(PCR产物)5μL,犜犪狇酶(5U)1μL,dNTPs(2.5mmol/L)2μL,引物P21μL,引物P3(NJ型)1μL,10×犜犪狇酶缓冲液5μL,MgCl2(25mmol/L)6μL,DEPC水29μL;b) 印第安那型(IND)定型的PCR反应管中依次分别加入以下试剂,以配制50μLPCR反应体系:模板(PCR产物)5μL、犜犪狇酶1μL(5U)、dNTPs(2.5mmol/L)2μL、引物P21μL、引物P4(IND型)1μL,10×犜犪狇酶缓冲液5μL,25mmol/L的MgCl26μL、DEPC水29μL。5.3.7.3 将PCR反应管置于PCR扩增仪。94℃4min;94℃30s、55℃45s、72℃45s,30次循环,然后72℃5min,最后4℃保存。5.3.7.4 如同5.3.6,用TBE电泳缓冲液配制2%的琼脂糖(含0.5μg/mLEB)平板进行电泳检测。5.3.8 设立对照5.3.8.1 从5.3.3RNA抽提开始,就应设立阳性对照、阴性对照。以含有已知新泽西型(NJ)和印第安那型(IND)病毒株的细胞悬液作为阳性对照,用正常的BHK21或Vero细胞悬液作为阴性对照。5.3.8.2 只有在对照成立的情况下,试验有效,可进行结果判定。5.4 结果判定5.4.1 PCR后阳性对照会出现一条227bp的DNA片段。阴性对照没有该核酸带。5.4.2 半套式PCR后,与引物相应的血清型病毒的阳性对照会出现一条119bp的DNA片段。阴性对照没有该核酸带。5.4.3 待测样品PCR扩增后,如能在相应227bpDNA位置上有带,即可作出定性。半套式PCR后如出现一条119bp的DNA片段,即可定型为与引物相应的血清型。5.4.

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