SNT 0973-2010 进出口肉、肉制品及其他食品中肠出血性大肠杆菌O157H7检测方法

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书书书中华人民共和国出入境检验检疫行业标准!!#!#$%!&!代替!!#$%&’($$$进出口肉#肉制品及其他食品中肠出血性大肠杆菌$&’#$%#检测方法&’(’)*+,-(+.,./’,(’).01’*.))1-2+3!)#$%$&’#$%#+,*’-(4!*’-(5).673(-,6.(1’)/..6/.)+*5.)(-,6’85.)(%!&!0&&0!&发布%!&&0!’0!&实施中华人民共和国国家质量监督检验检疫总局发布食品伙伴网书书书前  言  本标准按照GB/T1.1—2009给出的规则起草。本标准代替SN/T0973—2000《进出口肉及肉制品中肠出血性大肠杆菌O157:H7检测方法》。本标准与SN/T0973—2000相比,主要技术变化如下:———补充了ELISA方法快速检测肠出血性大肠杆菌O157:H7的内容;———补充了微生物遗传分子特征性鉴定技术(基因分型)内容,便于对该危害性致病菌的溯源性调查和变异性研究。本标准由国家认证认可监督管理委员会提出并归口。本标准起草单位:中华人民共和国上海出入境检验检疫局、中华人民共和国深圳出入境检验检疫局、3M中国有限公司、生物梅里埃(中国)公司。本标准主要起草人:张树宏、顾鸣、韩伟、杨捷琳、范放、吕敬章、万志刚、吕雷、朱贻华、刘毅。本标准所代替标准的历次版本发布情况为:———SN/T0973—2000。Ⅰ犛犖/犜0973—2010食品伙伴网进出口肉、肉制品及其他食品中肠出血性大肠杆菌犗157:犎7检测方法1 范围本标准规定了进出口肉及肉制品中肠出血性大肠杆菌O157:H7的检测方法。本标准适用于进出口肉、肉制品及其他食品中的肠出血性大肠杆菌O157:H7的定性检验。2 定义和术语下列术语和定义适用于本文件。2.1肠出血性大肠杆菌犗157:犎7 犲狀狋犲狉狅犺犲犿狅狉狉犺犪犵犻犮犈.犆狅犾犻犗157:犎7本细菌为需氧或兼性厌氧、革兰氏阴性,有周鞭毛,并有菌毛,不产生芽孢,发酵乳糖,不发酵或迟缓发酵山梨醇,氧化酶阴性,β葡萄糖苷酶阴性的杆菌。3 方法原理采用Tecra微孔板法大肠杆菌O157:H7快速检测试剂盒方法1)。样品增菌液煮沸裂解,裂解液与特异性抗体(一抗)包被的微孔板杂交后,用酶标抗体(二抗)再杂交,然后与特定底物反应生成有色化合物,利用肉眼或酶标仪进行检测。4 设备和材料4.1 恒温培养箱:(10℃~50℃)±1℃。4.2 均质器:小于12000r/min。4.3 高压灭菌锅。4.4 科玛嘉大肠杆菌O157:H7显色琼脂平板2)。4.5 VIDAS自动酶联免疫检测仪,法国梅利埃公司产品或其他等效产品3)。4.6 VITEK自动微生物生化鉴定仪或其他等效产品3)。1)、2) 分别为由美国3M公司和法国科玛嘉公司提供的产品的商品名。给出这一信息是为了方便本标准的使用者,并不表示对该产品的认可。如果其他等效产品具有相同的效果,则可使用这些等效的产品。3) 由法国生物梅里埃公司提供的产品的商品名。给出这一信息是为了方便本标准的使用者,并不表示对该产品的认可。如果其他等效产品具有相同的效果,则可使用这些等效的产品。4.7 微生物实验室通用玻璃器皿、移液管、玻皿等。4.8 铂铱或镍铬丝接种环,直径约3mm;玻璃L棒。1犛犖/犜0973—2010食品伙伴网4.9 电子天平:精确值0.001g。4.10 移液枪及枪头:1mL、0.2mL。4.11 洗板机。4.12 酶标仪(波长450nm)。5 培养基和试剂除另有说明外,所用试剂均为分析纯,水为蒸馏水(Tecra法试剂的配制使用重蒸水)。5.1 改良E.C新生霉素增菌肉汤[m(EC)n]:见附录A中A.1。5.2 山梨醇麦康凯琼脂(SMAC):见附录A中A.2。5.3 月桂基磷酸盐胰蛋白胨MUG肉汤(LSTMUG):见附录A中A.3。5.4 TecraTM微孔板法大肠杆菌O157快速检测试剂盒、VIDAS或VIDASUPO157:H7测试条或其他等效产品。5.5 含新生霉素的缓冲胰蛋白胨大豆肉汤(BTSB+N):见附录A中A.4。5.6 Imbentin补充液:见附录A中A.5。6 试样制备与保存6.1 制备从混合样品中取出代表性样品,将可食用部分(去掉可见脂肪)充分均质。用四分法所分出不少于500g作为试样,装入灭菌容器内,加封后标明标记。6.2 保存试样于-18℃以下冷冻保存。7 检测流程检测流程见图1。2犛犖/犜0973—2010食品伙伴网图1 大肠杆菌犗157:犎7的检测流程8 检测步骤8.1 常规方法8.1.1 增菌无菌操作称取6.1的试样25g放入含225mLm(EC)n增菌肉汤的均质容器中,置41℃±1℃培养18h~24h。8.1.2 分离对8.1.1增菌肉汤进行10倍递增稀释,从10-4、10-5、10-6稀释液中各取0.1mL滴加于SMAC平板或(和)科玛嘉大肠杆菌显色琼脂平板上,以灭菌L棒进行涂布并置于36℃±1℃培养18h~24h。在SMAC平板上可疑EHEC菌落呈淡褐色中心,扁平透明,边缘光滑,直径约2mm。在科玛嘉大肠杆菌显色琼脂平板上可疑EHEC菌落呈紫红色。8.1.3 生化试验和血清学鉴定每个SMAC平板或科玛嘉大肠杆菌显色琼脂平板上要求挑选不少于5个~8个可疑菌落,然后将3犛犖/犜0973—2010食品伙伴网挑出的每个菌落接种到LSTMUG肉汤中,36℃±1℃培养24h,出现产气,并且无荧光者,于普通营养琼脂进行纯化,并对单菌落参见附录B进行生化鉴定,或采用VITEK或等效的自动微生物生化鉴定仪进行鉴定,然后用O157:H7标准血清做凝集试验。最后,也可见附录C采用遗传分子特征性鉴定试验进行鉴定。8.1.4 结果报告根据选择性分离平板、生化试验和血清学鉴定结果,分别报告25g样品中检出或未检出肠出血性大肠杆菌O157:H7。8.2 犜犲犮狉犪犜犕微孔板法大肠杆菌犗157:犎7快速检测试剂盒方法8.2.1 增菌8.2.1.1 熟肉制品同8.1.18.2.1.2 生肉制品无菌操作称取6.1的试样25g放入含225mLm(EC)n增菌肉汤的500mL灭菌光口瓶中,然后再添加2.25mL的Imbentin补充液,置41℃±1℃培养18h~24h。8.2.1.3 其他食品无菌操作称取6.1的试样25g放入含225mLBTSB增菌肉汤的500mL灭菌光口瓶中,置41℃±1℃培养18h~24h。8.2.2 犜犲犮狉犪试剂盒检测8.2.2.1 检测前,将TecraELISA试剂盒置室温(20℃~25℃)10min。8.2.2.2 将前述增菌液样品热处理,添加50μL的样品添加物到合适的试管中,然后再加入1mL增菌到同一试管内,充分混合。8.2.2.3 进行热处理,在沸水浴中将试管加热15min后,将试管冷却到室温。8.2.2.4 每个微孔加入200μL的阳性/阴性对照液或200μL热处理过的样品,于36℃±1℃反应30min。吸取每个样品时需换用新的移液器吸头。8.2.2.5 倾除检测板微孔中的溶液,用洗液充满每个微孔,注意不要将气泡滞留于孔板底部、洗涤检板3次。8.2.2.6 每个微孔加入200μL的标记结合物,用塑料薄膜封住微孔后,于36℃±1℃反应30min。8.2.2.7 按8.2.2.5冲洗检测板微孔4次。8.2.2.8 每个微孔加入200μL的底物,置于室温20℃~25℃,放置15min。8.2.2.9 每个微孔添加20μL终止液。轻敲孔板边缘以混合内容物,然后在30min内判读结果。8.2.2.10 结果可依据试剂盒说明用肉眼判读或用酶标仪判读。酶标仪判读时,阴性对照孔OD值应<0.2,阳性对照孔OD值应>1.0。如果阳性对照OD值<1.0时,需要延长显色时间;30min后,如果阳性对照孔OD值仍然<1.0,即本次检测结果无效。样品孔OD值<0.2时判为阴性,≥0.2时判为阳性。8.2.3 阳性结果的鉴定出现阳性结果时,在SMAC平板和科玛嘉大肠杆菌显色琼脂平板上对原增菌肉汤进行培养分离,4犛犖/犜0973—2010食品伙伴网若有可疑菌落生长,依据8.1.3进行鉴定。8.2.4 结果报告8.2.4.1 若试剂盒检测结果为阴性,报告25g样品中未检出肠出血性大肠杆菌O157:H7。8.2.4.2 若试剂盒检测结果为阳性,则根据分离纯化及生化试验和血清学鉴定结果,分别报告25g样品中检出或未检出肠出血性大肠杆菌O157:H7。8.3 犞犐犇犃犛仪器法大肠杆菌犗157:犎7的快速筛选检测方法8.3.1 增菌同8.1.18.3.2 自动酶联免疫检测8.3.2.1 取1mL增菌液到灭菌小试管中,于沸水中加热15min。剩余的菌液于40℃保存,以便用于阳性确认。8.3.2.2 取肠出血性大肠埃希氏菌O157:H7的荧光免疫试剂盒,室温放置至少30min,使试剂温度平衡至环境温度。8.3.2.3 取适量加热处理并冷却后的增菌液到试剂盒测试孔中,通过自动或手动操作免疫反应过程后,检测反应强度(荧光强度或吸光度),与参照值比较,得出检验结果。详细操作需根据所用仪器及试剂盒的说明进行。8.3.3 阳性结果的鉴定出现阳性结果时,在SMAC平板和科玛嘉大肠杆菌显色琼脂平板上对原增菌肉汤进行分离培养,若有可疑菌落生长,依据8.1.3进行鉴定。8.3.4 结果报告8.3.4.1 若VIDAS检测结果为阴性,报告25g样品中未检出肠出血性大肠杆菌O157:H7。8.3.4.2 若VIDAS检测结果为阳性,则根据分离纯化及生化试验和血清学鉴定结果,分别报告25g样品中检出或未检出肠出血性大肠杆菌O157:H7。5犛犖/犜0973—2010食品伙伴网附 录 犃(规范性附录)培养基和试剂犃.1 改良犈.犆新生霉素增菌肉汤犿(犈犆)狀胰蛋白胨                  20.0g3号胆盐1.12g乳糖5.0g无水磷酸氢二钾4.0g无水磷酸二氢钾1.5g氯化钠5.0g水1000.0mL将上述成分溶于水后校正pH至6.9±1,分装后置121℃高压灭菌15min,取出滤灭菌的新生霉素溶液20mg/L加入,使最终浓度为20μg/L。犃.2 山梨醇麦康凯平板(犛犕犃犆)蛋白胨17.0g月示胨3.0g猪胆盐(或牛、羊胆盐)5.0g氯化钠5.0g琼脂17.0g水1000.0mL山梨醇10.0g0.01%结晶紫水溶液10.0mL0.5%中性红水溶液5.0mL1%亚碲酸钾溶液(最终量为)2.5mL将蛋白胨、月示胨、胆盐和氯化钠溶解于400mL蒸馏水中,校正pH至7.2将琼脂加入于600mL蒸馏水中加热溶解,将两液合并,分装于锥形瓶内高压灭菌(121℃、15min备用)。临用前加热融化琼脂,趁热加入山梨醇,冷却至50℃~55℃时加入结晶紫和中性红溶液并加入过滤出8菌的亚碲酸钾溶液,使最终浓度为2.5mg/L,并加入头孢克肟(Cefixime),使最终浓度为0.05mg/L。犃.3 月桂基磷酸盐胰蛋白胨(犔犛犜)犕犝犌肉汤(犔犛犜犕犝犌)胰蛋白胨或胰酪胨(Tryticase)20.0g氯化钠5.0g乳糖5.0g磷酸氢二钾2.75g磷酸二氢钾2.75g月桂基磷酸钠0.1g6犛犖/犜0973—2010食品伙伴网四甲基伞形酮B葡萄糖醛苷酸(MUG)0.1g水1000.0mL将上述成分溶解于蒸馏水中,分装到有倒立发酵管的试管中,每管10mL,于121℃高压灭菌15min,最终pH6.8±0.2。犃.4 含新生霉素的缓冲胰蛋白胨大豆肉汤(犅犜犛犅+犖)胰蛋白胨17g大豆蛋白胨3g磷酸氢二钾4g氯化钠5g葡萄糖2.5g蒸馏水1000mL或采用以下配方:胰蛋白胨大豆肉汤(TS

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