snt 2229-2008 进出口食品中稻瘟灵残留量检测方法 气相色谱-质谱法

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书书书中华人民共和国出入境检验检疫行业标准犛犖/犜2229—2008进出口食品中稻瘟灵残留量检测方法犇犲狋犲狉犿犻狀犪狋犻狅狀狅犳犻狊狅狆狉狅狋犺犻狅犾犪狀犲狉犲狊犻犱狌犲狊犻狀犳狅狅犱狊狋狌犳犳狊犳狅狉犻犿狆狅狉狋犪狀犱犲狓狆狅狉狋20081118发布20090601实施中华人民共和国国家质量监督检验检疫总局发布食品伙伴网书书书前  言本标准的附录A和附录B均为资料性附录。本标准由国家认证认可监督管理委员会提出并归口。本标准起草单位:中华人民共和国黑龙江出入境检验检疫局、中华人民共和国内蒙古出入境检验检疫局。本标准主要起草人:杨长志、康庆贺、吴岩、李刚、刘永、王传松、吴岚、程阳。本标准系首次发布的出入境检验检疫行业标准。Ⅰ犛犖/犜2229—2008食品伙伴网进出口食品中稻瘟灵残留量检测方法1 范围本标准规定了进出口食品中稻瘟灵残留量的气相色谱和气相色谱质谱检测方法。本标准适用于大米、玉米、柑橘、苹果、菠菜、大葱、松籽仁、葵花籽仁、茶叶、鱼、牛肝、鸡肾、蜂蜜及牛奶中稻瘟灵残留量的检测和确证。2 方法提要试样中残留的稻瘟灵用正己烷或正己烷丙酮、乙腈提取,提取液浓缩后,经石墨炭黑固相萃取柱、中性氧化铝固相萃取柱、氟罗里硅土固相萃取柱、HLB固相萃取柱净化,用气相色谱仪检测、气相色谱质谱仪检测和确证,外标法定量。3 试剂和材料除另有规定外,所有试剂均为分析纯,水为去离子水。3.1 丙酮:色谱纯。3.2 正己烷:色谱纯。3.3 乙腈:色谱纯。3.4 甲醇:色谱纯。3.5 磷酸氢二钠。3.6 磷酸二氢钠。3.7 氯化钠。3.8 无水硫酸钠:经650℃灼烧4h,置于干燥器内备用。3.9 正己烷丙酮溶液(2+1,体积比)。3.10 正己烷丙酮溶液(85+15,体积比)。3.11 正己烷丙酮溶液(8+2,体积比)。3.12 30%甲醇溶液:取300mL甲醇,加入700mL水,混匀。3.13 80%甲醇溶液:取800mL甲醇,加入200mL水,混匀。3.14 饱和氯化钠溶液:称取36g氯化钠,用水溶解并稀释至100mL。3.15 硫酸钠溶液(20g/L):称取20g无水硫酸钠,用水溶解并稀释至1000mL。3.16 磷酸盐缓冲液(0.2mol/L,pH7.4):称取磷酸氢二钠71.64g和磷酸二氢钠31.21g,分别用水溶解并稀释至1000mL。量取磷酸氢二钠水溶液810mL和磷酸二氢钠水溶液190mL混合于1000mL烧瓶中。3.17 稻瘟灵标准品(isoprothiolane,C12H18O4S2,CAS50512351):纯度大于等于99%。3.18 稻瘟灵标准溶液:准确称取适量稻瘟灵的标准品,用丙酮配成浓度为100μg/mL的标准储备液,标准储备液可在-18℃条件下储存6个月;根据需要再用正己烷稀释成适当浓度的标准工作液,标准工作液可在0℃~4℃条件下储存3个月。3.19 石墨炭黑固相萃取柱:1000mg,6mL。使用前依次用3mL丙酮、5mL正己烷活化。3.20 中性氧化铝固相萃取柱:1000mg,6mL。使用前依次用3mL丙酮、5mL正己烷活化。备用。3.21 氟罗里硅土固相萃取柱:1000mg,6mL。使用前依次用3mL丙酮、5mL正己烷活化。备用。3.22 HLB固相萃取柱:60mg,3mL。使用前依次用3mL甲醇、3mL水活化。1犛犖/犜2229—2008食品伙伴网4 仪器和设备4.1 气相色谱仪:配ECD检测器。4.2 气相色谱质谱联用仪:配负化学电离源。4.3 电子天平:感量0.01mg,0.01g。4.4 固相萃取装置。4.5 微波炉:650W。4.6 粉碎机。4.7 组织捣碎机。4.8 离心机:4000r/min。4.9 旋涡混合器。4.10 旋转蒸发器。4.11 氮吹仪。4.12 均质器:12000r/min。4.13 具塞玻璃离心管:15mL、50mL。4.14 无水硫酸钠柱:8.0cm×1.5cm(内径)玻璃柱,内装5cm高无水硫酸钠。5 试样制备与保存5.1 试样制备5.1.1 柑橘、苹果、菠菜取有代表性样品约500g(不可用水洗涤),将其可食部分切碎后,用组织捣碎机将样品加工成浆状,装入洁净容器作为试样,密封并标明标记。5.1.2 大葱取有代表性样品约500g(不可用水洗),将其可食部分切成约2cm的段,装入洁净容器作为试样,密封并标明标记。5.1.3 玉米、大米、茶叶、松籽仁、葵花籽仁取有代表性样品约500g,用粉碎机粉碎,混匀,装入洁净容器作为试样,密封并标明标记。5.1.4 牛肝、鸡肾、鱼取有代表性样品约500g,将其可食部分切碎后,用组织捣碎机将充分捣碎均匀,装入洁净容器作为试样,密封并标明标记。5.1.5 蜂蜜取有代表性样品约500g。对于无结晶的样品将其搅拌均匀;对于有结晶析出的样品,在密闭情况下,将样品置于不超过60℃的水浴中温热,待样品全部融化后搅拌均匀,迅速冷却至室温。在融化时应注意防止水分挥发。装入洁净容器作为试样,密封并标明标记。5.2 试样保存玉米、大米、茶叶、松籽仁、葵花籽仁、蜂蜜和牛奶等试样于4℃以下保存;柑橘、苹果、菠菜、大葱、牛肝、鸡肾和鱼等试样于-18℃以下保存。在制样的操作过程中,应防止样品污染或发生残留物含量的变化。6 测定步骤6.1 提取6.1.1 玉米、大米、松籽仁、葵花籽仁称取试样约5g(精确到0.01g)于50mL离心管中,加入5g无水硫酸钠(3.8)和20mL乙腈(3.3),用均质器以10000r/min均质2min,4000r/min离心5min。将上清液转移至100mL浓缩瓶2犛犖/犜2229—2008食品伙伴网中。再用20mL乙腈重复提取一次,合并提取液于同一100mL浓缩瓶中,55℃旋转浓缩至近干,再用氮气流吹干。加入6mL正己烷(3.2)溶解残渣待净化。6.1.2 柑橘、苹果、菠菜、牛肝、鸡肾、鱼称取试样约5g(精确到0.01g)于50mL离心管中,加入10g无水硫酸钠和20mL正己烷丙酮(3.9)溶液,用均质器以12000r/min均质2min,4000r/min离心5min。将上清液通过无水硫酸钠柱脱水于100mL浓缩瓶中。再用20mL正己烷丙酮(3.9)溶液重复提取一次,合并提取液于同一100mL浓缩瓶中,45℃旋转浓缩至近干,再用氮气流吹干。加入5mL正己烷溶解残渣待净化。6.1.3 茶叶称取试样约2g(精确到0.01g)于50mL离心管中,加入4mL饱和氯化钠溶液(3.14),在旋涡混合器上充分混合0.5min,放置0.5h,加入20mL乙腈,用均质器以10000r/min均质2min,4000r/min离心5min。将上清液转移至100mL浓缩瓶中。再用20mL乙腈重复提取一次,合并提取液于同一100mL浓缩瓶中,55℃旋转浓缩约5mL。将浓缩提取液转移至250mL分液漏斗中,加入100mL硫酸钠溶液(3.15)和40mL正己烷,振摇2min,静置分层,将上清液通过无水硫酸钠柱脱水于200mL浓缩瓶中。再用40mL正己烷重复提取一次,合并提取液于同一200mL浓缩瓶中,45℃旋转浓缩至近干,再用氮气流吹干。加入5mL正己烷溶解残渣待净化。6.1.4 蜂蜜称取试样约5g(精确到0.01g)于50mL离心管中,加入15mL水和5mL丙酮(3.1),在旋涡混合器上充分混合0.5min。然后加入5g氯化钠(3.7)和20mL正己烷,在旋涡混合器上充分混合2min,4000r/min离心5min。将上清液通过无水硫酸钠柱脱水于100mL浓缩瓶中。再用20mL正己烷重复提取一次,合并提取液于同一100mL浓缩瓶中,45℃旋转浓缩至近干,再用氮气流吹干。加入6mL30%甲醇溶液(3.12)溶解残渣待净化。6.1.5 牛奶称取试样约5g(精确到0.01g)于50mL离心管中,加入2g氯化钠和20mL正己烷丙酮(3.9)溶液,在旋涡混合器上充分混合2min,4000r/min离心5min。将上清液通过无水硫酸钠柱脱水于100mL浓缩瓶中。再用20mL正己烷重复提取一次,合并提取液于同一100mL浓缩瓶中,45℃旋转浓缩至近干,再用氮气流吹干。加入6mL正己烷溶解残渣待净化。6.1.6 大葱称取试样约5g(精确到0.01g)于50mL离心管中,置于微波炉(中火)中处理40s,加入2g氯化钠和20mL乙腈,用均质器以10000r/min均质2min,4000r/min离心5min,将上清液转移至预先加入100mL磷酸盐缓冲溶液(3.16)的250mL分液漏斗中。再用20mL乙腈重复提取一次,合并提取液于同一250mL分液漏斗中,加入40mL正己烷,振摇2min,静置分层,将上清液通过无水硫酸钠柱脱水于200mL浓缩瓶中。再用40mL正己烷重复提取一次,合并提取液于同一200mL浓缩瓶中,45℃旋转浓缩至近干,再用氮气流吹干。加入5mL正己烷溶解残渣待净化。6.2 净化6.2.1 玉米、大米、松籽仁、葵花籽仁、牛肝、鸡肾、鱼将上述样液全部转移到中性氧化铝固相萃取柱(3.20)中,控制流速在1mL/min~2mL/min,弃去流出液。再自上而下将中性氧化铝固相萃取柱与氟罗里硅土固相萃取柱(3.21)串接,加入10mL正己烷丙酮(3.11)溶液洗脱,控制流速在1mL/min~2mL/min,收集洗脱液。洗脱液经60℃氮吹仪吹干后,用正己烷溶解并定容5mL,供气相色谱和气相色谱质谱仪测定。6.2.2 柑橘、苹果、菠菜、大葱将上述样液全部转移到石墨炭黑固相萃取柱(3.19)中,控制流速在1mL/min~2mL/min,弃去流出液。再自上而下将石墨炭黑固相萃取柱与氟罗里硅土固相萃取柱串接,加入10mL正己烷丙酮3犛犖/犜2229—2008食品伙伴网(3.10)溶液洗脱,控制流速在1mL/min~2mL/min,收集洗脱液。洗脱液经60℃氮吹仪吹干后,用正己烷溶解并定容5mL,供气相色谱和气相色谱质谱仪测定。6.2.3 茶叶将上述样液全部转移到石墨炭黑固相萃取柱中,控制流速在1mL/min~2mL/min,弃去流出液。再自上而下将石墨炭黑固相萃取柱与氟罗里硅土固相萃取柱串接,加入10mL正己烷丙酮(3.10)溶液洗脱控制流速在1mL/min~2mL/min,收集洗脱液。洗脱液经60℃氮吹仪吹干。用6mL30%甲醇溶液(3.12)溶解残渣转移到HLB固相萃取柱(3.22)中,控制流速在1mL/min~2mL/min,弃去流出液。加入14mL80%甲醇溶液(3.13)溶液洗脱,控制流速在1mL/min~2mL/min,收集洗脱液。洗脱液经60℃氮吹仪吹至约3mL后,准确加入2mL正己烷和5mL硫酸钠水溶液,在旋涡混合器上充分混合2min,在3000r/min下离心3min。取上清液供气相色谱和气相色谱质谱仪测定。6.2.4 蜂蜜将上述样液全部转移到HLB固相萃取柱上,控制流速在1mL/min~2mL/min,弃去流出液。加入14mL80%甲醇溶液(3.13)溶液洗脱,控制流速在1mL/min~2mL/min,收集洗脱液。洗脱液经60℃氮吹仪吹至约3mL后,准确加入5mL正己烷和5mL硫酸钠水溶液,在旋涡混合器上充分混合2min,3000r/min离心3min。取上清液供气相色谱和气相色谱质谱仪测定。6.2.5 牛奶将上述样液全部转移到氟罗里硅土固相萃取柱上,控制流速在1mL/min~2mL/min,弃去流出液。加入10mL正己烷丙酮(3.10)溶液洗脱,控制流速在1mL/min~2mL/min,收集洗脱液。洗脱液经60℃氮吹仪吹干后,用正己烷溶解并定容5mL,供气相色谱和气相色谱质谱仪测定。6.3 测定6.3.1 气相色谱条件a) 色谱柱:Rtx1701石英毛细管柱,30m×0.25m

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