SNT 2051-2008 食品、化妆品和饲料中牛羊猪源性成分检测方法 实时PCR法

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书书书中华人民共和国出入境检验检疫行业标准犛犖/犜2051—2008食品、化妆品和饲料中牛羊猪源性成分检测方法 实时犘犆犚法犇犲狋犲狉犿犻狀犪狋犻狅狀狅犳犫狅狏犻狀犲,狅狏犻狀犲,狆狅狉犮犻狀犲犱犲狉犻狏犲犱犿犪狋犲狉犻犪犾狊犻狀犳狅狅犱,犮狅狊犿犲狋犻犮犪狀犱犳犲犲犱—犚犲犪犾狋犻犿犲犘犆犚犿犲狋犺狅犱20080429发布20081101实施中华人民共和国国家质量监督检验检疫总局发布书书书前  言本标准的附录F为规范性附录,附录A、附录B、附录C、附录D、附录E为资料性附录。本标准由国家认证认可监督管理委员会提出并归口。本标准起草单位:中华人民共和国辽宁出入境检验检疫局、宝生物工程(大连)有限公司、中国检验检疫科学研究院。本标准主要起草人:曹际娟、李晶泉、郑秋月、于爱丽、陈颖、姚珊、谢琰。本标准系首次发布的出入境检验检疫行业标准。Ⅰ犛犖/犜2051—2008食品、化妆品和饲料中牛羊猪源性成分检测方法 实时犘犆犚法1 范围本标准规定了食品、化妆品和饲料中牛、羊(绵羊和山羊)、猪源性成分实时PCR检测方法。本标准适用于食品、化妆品和饲料中牛、羊(绵羊和山羊)、猪源性成分的鉴别检测。2 规范性引用文件下列文件中的条款通过本标准的引用而成为本标准的条款。凡是注日期的引用文件,其随后所有的修改单(不包括勘误的内容)或修订版均不适用于本标准,然而,鼓励根据本标准达成协议的各方研究是否可使用这些文件的最新版本。凡是不注日期的引用文件,其最新版本适用于本标准。GB/T6682 分析实验室用水规格和试验方法(GB/T6682—1992,neqISO3696:1987)GB19489 实验室 生物安全通用要求3 术语和定义、缩略语下列术语和定义、缩略语适用于本标准。3.1 术语和定义3.1.1牛源性成分 犫狅狏犻狀犲犱犲狉犻狏犲犱犿犪狋犲狉犻犪犾狊牛种属特异性DNA片段。3.1.2羊源性成分 狅狏犻狀犲犱犲狉犻狏犲犱犿犪狋犲狉犻犪犾狊羊种属特异性DNA片段。3.1.3猪源性成分 狆狅狉犮犻狀犲犱犲狉犻狏犲犱犿犪狋犲狉犻犪犾狊猪种属特异性DNA片段。3.1.4实时荧光犘犆犚 狉犲犪犾狋犻犿犲犳犾狌狅狉犲狊犮犲狀狋犘犆犚实时荧光聚合酶链式反应。3.1.5犆狋值 犆狔犮犾犲狋犺狉犲狊犺狅犾犱犆狋每个反应管内的荧光信号达到设定的阈值时所经历的循环数。3.2 缩略语3.2.1犇犖犃 犱犲狅狓狔狉犻犫狅狀狌犾犲犻犮犪犮犻犱脱氧核糖核酸。3.2.2犘犆犚 狆狅犾狔犿犲狉犪狊犲犮犺犪犻狀狉犲犪犮狋犻狅狀聚合酶链式反应。1犛犖/犜2051—20083.2.3犜犪狇 犜犺犲狉犿狌狊犪狇狌犪狋犻犮狌水生栖热菌。3.2.4犉犃犕 6犮犪狉犫狅狓狔犳犾狌狅狉犲狊犮犲犻狀6羧基荧光素。3.2.5犚犗犡 5犮犪狉犫狅狓狔犡狉犺狅犱犪犿犻狀犲6羧基X罗丹明。3.2.6犎犈犡 5犺犲狓犪犮犺犾狅狉狅犳犾狌狅狉犲狊犮犲犻狀6羧基2′,4,4′,5′,7,7′六氯荧光素。3.2.7犆犗犡Ⅰ 犆狔狋狅犮犺狉狅犿犲犆狅狓犻犱犪狊犲狊狌犫狌狀犻狋Ⅰ细胞色素C氧化酶亚单位Ⅰ。4 原理本标准采用TaqMan实时荧光PCR技术,根据线粒体DNA(COXⅠ)基因上动物种间多态性的差异而进行动物源性种类鉴定。本标准应用多色荧光检测技术,采用多重PCR方法。牛、羊、猪源性成分单体系检测时,对反应液中含有的两种不同荧光染料进行双通道同步检测,在同一反应管内对牛或羊或猪的COXⅠ基因及内参照反应同时进行扩增,并通过标记两种不同荧光物质(FAM、HEX)的特异性探针进行特异性杂交,两色荧光同步检测;牛羊源性成分混合体系检测时,对反应液中含有的三种不同荧光染料进行三通道同步检测,在同一反应管内分别对牛、羊特异的COXⅠ基因及内参照(InternalControl)同时进行扩增,并通过标记三种不同荧光物质(FAM、HEX、ROX)的特异性探针进行特异性杂交,多色荧光同步检测。其中,对内参照反应的检测,可以监控反应是否正常进行,防止假阴性结果。5 材料与试剂5.1 设备和材料5.1.1 实时荧光PCR检测系统。5.1.2 高速台式冷冻离心机(最高转速12000r/min以上)。5.1.3 台式离心机(最高转速2000r/min)。5.1.4 振荡器。5.1.5 冰箱(2℃~8℃和-20℃或-80℃)。5.1.6 微量可调移液器及配套吸头(10μL、100μL、1000μL)。5.1.7 实时荧光PCR反应管。5.1.8 离心管。5.1.9 水浴槽。5.1.10 加热器。5.1.11 可移动紫外灯。5.1.12 磁力架。5.2 试剂除特别说明以外,所用试剂均为分析纯,水为按照GB/T6682规定的一级水。所有试剂均用无DNA酶污染的容器分装。2犛犖/犜2051—20085.2.1 基因组DNA提取试剂盒1):组成、功能及使用注意事项参见附录A。5.2.2 牛源性成分实时荧光PCR检测试剂盒1):组成、功能及使用注意事项参见附录B。5.2.3 羊源性成分实时荧光PCR检测试剂盒1):组成、功能及使用注意事项参见附录C。5.2.4 猪源性成分实时荧光PCR检测试剂盒1):组成、功能及使用注意事项参见附录D。5.2.5 牛羊源性成分实时荧光PCR检测试剂盒1):组成、功能及使用注意事项参见附录E。6 抽样6.1 采样工具下列采样工具应经180℃±2℃,2h高温灭菌:剪刀、镊子、扦子。6.2 样品采集待检样品装入一次性塑料袋或其他灭菌容器,编号,送实验室。6.3 样品储运样品采集后,将采集的样品放入密闭的塑料袋内(一个采样点的样品放入一个塑料袋),于保温箱中加冰、密封,送实验室。7 操作方法7.1 实验室的设备和管理实验室的设备与管理见附录F。7.2 样品模板犇犖犃的制备7.2.1 在样本制备区进行。组成、功能及使用注意事项参见附录A。7.2.2 固态食品和饲料中基因组DNA的提取试剂盒参见附录A中的第A.1章固态食品和饲料中基因组DNA提取试剂盒处理样品。7.2.3 液态食品和化妆品中基因组DNA的提取试剂盒参见附录A中的第A.2章液态食品和化妆品中基因组DNA提取试剂盒处理样品。模板DNA溶液放于冰上保存备用。若长期保存须存放于-20℃或-80℃冰箱。7.3 检测7.3.1 扩增试剂准备在反应混合物配制区进行。为确保检测结果的准确性,在进行实际样品检测时,应设立空白对照、阴性对照和阳性对照实验。实时荧光PCR反应体系见表1。从牛、羊、猪、牛羊源性成分实时荧光PCR检测试剂盒(分别参见附录B、C、D、E)中取出相应的实时荧光PCR反应用试剂,融化后,2000r/min离心5s。向每个实时荧光PCR反应管中各分装24μL反应混合液(除模板DNA外),转移至上样区。表1 实时荧光犘犆犚反应体系试 剂 成 分体  积2×预混液12.5μL引物混合液1μL探针混合液1μL样品DNA(1ng/μL~100ng/μL)1μL(ddH2O)至25μL  注1:空白对照实验时,用ddH2O替代样品DNA。注2:阴性对照实验时,用非目标源性成分替代样品DNA。注3:阳性对照实验时,用相应的牛或羊或猪或牛羊混合DNA替代样品DNA。  1) 由指定单位提供,给出这一信息是为了方便本标准的使用者,并不表示对该产品的认可。如果其他等效产品具有相同的效果,则可使用这些等效产品。3犛犖/犜2051—20087.3.2 加样在上样区进行。在各设定的实时荧光PCR反应管中分别加入制备的模板DNA溶液,盖紧管,离心5s~10s。7.3.3 实时荧光犘犆犚检测在检测区进行。将本标准7.3.2中离心后的实时荧光PCR反应管放入实时荧光PCR检测系统内,记录样本摆放顺序。循环条件设置:95℃/10s,1个循环;95℃/5s,60℃/20s(24s、30s、31s、34s)2),40个循环,在每次循环的退火时收集荧光。检测结束后,根据扩增曲线和Ct值判定结果。8 结果判定8.1 结果分析条件设定直接读取检测结果。阈值设定原则根据仪器噪声情况进行调整。8.2 质控标准8.2.1 牛、羊、猪源性成分单体系检测阴性对照:有HEX荧光信号检出,并出现典型的扩增曲线,Ct值应小于28.0,而无FAM荧光信号检出。8.2.2 牛、羊源性成分混合体系检测阴性对照:有HEX荧光信号检出,并出现典型的扩增曲线,Ct值应小于28.0,而无FAM和ROX荧光信号检出。8.2.3 牛、羊、猪源性成分单体系检测阳性对照:有FAM和HEX荧光信号检出,并出现典型的扩增曲线,Ct值应小于28.0。8.2.4 牛、羊源性成分混合体系检测阳性对照:有FAM、ROX和HEX荧光信号检出,并出现典型的扩增曲线,Ct值应小于28.0。8.3 结果判定与表述8.3.1 有效原则Ct值小于等于35视为有效值,Ct值大于35视为无效值。8.3.2 结果的判定8.3.2.1 当使用附录B、C、D对牛、羊、猪源性成分单体系检测时,实验结果的判定情况说明见表2。表2 对牛、羊、猪单体系检测时结果的判定情况FAM荧光HEX荧光结果判定情况+-(+) 如果同时进行的阴性对照实验结果正常,检测实际样品时,不管HEX荧光信号是否检出(如果检测样品浓度高会抑制内参照DNA的扩增),如果有FAM荧光检出,且Ct值小于等于35,判定为含有牛、羊、猪源性成分;如果Ct值大于35,可视为不含有牛、羊、猪源性成分。-+ 如果同时进行的阳性对照实验结果正常,检测实际样品时有HEX荧光检出,无FAM荧光检出,判定为不含有牛、羊、猪源性成分。-- PCR反应失败。注意以下方面后再次进行反应: a) 如果同时进行的阳性对照实验结果正常,则可能是样品DNA制备有问题,如样品中可能存在PCR反应的抑制物等; b) 如果同时进行的阳性对照实验结果不正常,则可能是实验操作失败或试剂失活。8.3.2.2 当使用附录E对牛、羊源性成分混合体系检测时,实验结果的判定情况说明见表3。  2) 使用AppliedBiosystems公司RealTimePCR扩增仪时应根据仪器型号设定不同时间。7700/7900HT设定为30s,7000/7300设定为31s,7500设定为34s,7500Fast设定为24s。4犛犖/犜2051—2008表3 对牛、羊混合体系同时检测时结果的判定情况FAM荧光ROX荧光HEX荧光结果判定情况+--+++-(+) 如果同时进行的阴性对照实验结果正常,检测实际样品时,不管HEX荧光信号是否检出(如果检测样品浓度高会抑制内参照DNA的扩增),如果有FAM荧光检出,且Ct值小于等于35,判定为含有牛源性成分;如果Ct值大于35,可视为不含有牛源性成分。无ROX荧光检出,判定为不含有羊源性成分。 如果同时进行的阴性对照实验结果正常,检测实际样品时,不管HEX荧光信号是否检出(如果检测样品浓度高会抑制内参照DNA的扩增),如果有ROX荧光检出,且Ct值小于等于35,判定为含有羊源性成分;如果Ct值大于35,可视为不含有羊源性成分。无FAM荧光检出,判定为不含有牛源性成分。 如果同时进行的阴性对照实验结果正常,检测实际样品时,不管HEX荧光信号是否检出(如果检测样品浓度高会抑制内参照DNA的扩增),如果有FAM和ROX荧光同时检出,且Ct值小于等于35,判定为即含有牛源性成分又含有羊源性成分;如果FAM通道Ct值大于35,可视为不含有牛源性成分;如果ROX通道Ct值大于35,可视为不含有羊源性成分。--+ 如果同时进行的阳性对照实验结果正常,检测实际样品时有HEX荧光检出,无FAM荧光检出,判定为不含有牛源性成分;无ROX荧光检出,判定为不含有羊源性成分。--- PCR反应失败。注意以下方面后再次进行反应: a) 如果同时进行的阳性对照实验结果正常,则可能是样品DNA制备有问题,如样品中可能存在PCR反应的抑制物等; b) 如果同时进行的阳性对照实验结果不正常,则可能是实验操作失败或试剂失活。8.3.3 结果的表述结果陈述为“检出牛、羊、猪源性成分。”和“未检出牛、羊、猪源

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