GB 23200.39-2016 食品中噻虫嗪及其代谢物噻虫胺残留量的测定 液相色谱-质谱 质谱法

ICSX中华人民共和国国家标准GBGB23200.39—2016代替SN/T3139—2012食品安全国家标准食品中噻虫嗪及其代谢物噻虫胺残留量的测定液相色谱－质谱/质谱法Nationalfoodsafetystandards—DeterminationofthiamethoxamanditsmetaboliteclothianidinresiduesinfoodsLiquidchromatography-massspectrometry2016-12-18发布2017-06-18实施中华人民共和国国家卫生和计划生育委员会中华人民共和国农业部发布国家食品药品监督管理总局GB23200.39—2016I前言本标准代替SN/T3139-2012《出口农产品中噻虫嗪及其代谢物噻虫胺残留量的测定液相色谱-质谱/质谱法》。本标准与SN/T3139-2012相比，主要变化如下：—标准文本格式修改为食品安全国家标准文本格式；—标准名称中“出口农产品”改为“食品”；—标准范围中增加“其它食品可参照执行”。本标准所代替标准的历次版本发布情况为：—SN/T3139-2012。GB23200.39—20161食品安全国家标准食品中噻虫嗪及其代谢物噻虫胺残留量的测定液相色谱－质谱/质谱法1范围本标准规定了食品中噻虫嗪和噻虫胺残留量的液相色谱-质谱/质谱检测方法。本标准适用于大米、大豆、栗子、菠菜、油麦菜、洋葱、茄子、马铃薯、柑橘、蘑菇、茶等植物源性产品和鸡肝、猪肉、牛奶等动物源性产品中噻虫嗪、噻虫胺残留量的检测和确证，其它食品可参照执行。2规范性引用文件下列文件对于本文件的应用是必不可少的。凡是注日期的引用文件，仅所注日期的版本适用于本文件。凡是不注日期的引用文件，其最新版本（包括所有的修改单）适用于本文件。GB2763食品安全国家标准食品中农药最大残留限量GB/T6682分析实验室用水规格和试验方法3原理用0.1%乙酸-乙腈超声提取试样中的噻虫嗪和噻虫胺残留物，采用基质分散固相萃取剂净化，超高效液相色谱-质谱/质谱仪测定，外标法定量。4试剂和材料除另有说明外，所用试剂均为色谱级，水为符合GB/T6682中规定的一级水。4.1试剂4.1.1乙腈（CH3CN）。4.1.2乙酸铵（CH3COONH4）。4.1.3乙酸（CH3COOH）：分析纯。4.1.4甲酸（HCOOH）。4.1.5甲醇（CH3OH）。4.1.6正己烷（C6H14）。4.1.7无水硫酸镁（MgSO4）：分析纯。4.1.8无水硫酸钠（Na2SO4）：分析纯。4.1.9N-丙基乙二胺（PSA）吸附剂：粒径40µm～60µm。4.1.10石墨化炭黑吸附剂（GCB）：粒径120µm～400µm。4.1.11十八烷基硅烷(ODS)键合相吸附剂（C18）：粒径40µm～60µm。4.1.12基质分散固相萃取剂：a)针对大米、茄子、洋葱、马铃薯、柑橘样品：50mgPSA、150mgMgSO4；b)针对菠菜、油麦菜样品：50mgPSA、150mgMgSO4、10mgGCB；c)针对栗子、蘑菇、牛奶样品：50mgPSA、150mgMgSO4、50mgC18；d)针对茶叶、大豆样品：50mgPSA、150mgMgSO4、50mgC18、10mgGCB；e)针对鸡肝、猪肉样品：50mgPSA、150mgMgSO4、50mgC18。4.2溶液配制4.2.10.1%乙酸-乙腈溶液：取1mL乙酸，加入乙腈定容到1000mL，混匀。4.2.210mmol/L乙酸铵溶液（含0.1%甲酸）：准确称取0.16g乙酸铵于200mL容量瓶中，先用少量水溶解后加入200µL甲酸，再用水定容至刻度，混匀，现用现配。4.3标准品GB23200.39—201624.3.1噻虫嗪标准品（thiamethoxam）：CAS号153719-23-4，分子式C8H10ClN5O3S，分子量291.7，纯度≥99%。4.3.2噻虫胺标准品（clothianidin）：CAS号205510-53-8，分子式C6H8ClN5O2S，分子量250.2，纯度≥99%。4.4标准溶液配制4.4.1噻虫嗪标准储备溶液：准确称取适量的噻虫嗪标准品（精确至0.01mg），用乙腈溶解，配制成1000µg/mL的标准储备溶液，-18℃下保存。4.4.2噻虫胺标准储备溶液：准确称取适量的噻虫胺标准品（精确至0.01mg），用乙腈溶解，配制成1000µg/mL的标准储备溶液，-18℃下保存。4.4.3噻虫嗪和噻虫胺混合标准工作溶液：根据需要分别取适量噻虫嗪标准储备溶液和噻虫胺标准储备溶液，用乙腈稀释成1µg/mL标准工作溶液，-18℃下保存。4.4.4基质空白溶液：将不同基质的阴性样品分别按照“提取与净化”处理后得到的溶液。4.4.5基质标准工作液：根据实验需要吸取适量混合标准工作溶液、用基质空白溶液稀释成适当浓度的标准工作液，现用现配。4.5材料4.5.1微孔滤膜：尼龙，13mm（i.d.），0.2µm。5仪器和设备5.1超高效液相色谱-串联质谱仪：配有电喷雾离子源（ESI）。5.2粉碎机。5.3组织捣碎机。5.4分析天平：感量分别为0.01mg和0.01g。5.5超声波振荡器。5.6旋涡混匀器。5.7离心机：转速不低于4000r/min。5.8离心管：具塞，聚四氟乙烯，50mL。5.9分液漏斗：100mL，具塞。6试样制备与保存在制样的操作过程中，应防止样品受到污染或发生农药残留含量的变化。6.1试样制备6.1.1大米、大豆、栗子、茶叶取代表性样品500g，用粉碎机粉碎。混匀，均分成两份作为试样，分装，密闭，于0℃~4℃保存。6.1.2菠菜、油麦菜、洋葱、茄子、马铃薯、柑橘、蘑菇取代表性样品1000g，将其（不可用水洗涤）切碎后，依次用捣碎机将样品加工成浆状。混匀，均分成两份作为试样，分装，密闭，于0℃~4℃保存。6.1.3鸡肝、猪肉取代表性样品500g，将其切碎后，依次用捣碎机将样品加工成浆状，混匀，均分成两份作为试样，分装，密闭，于-18℃保存。6.1.4牛奶取代表性样品约500g，混匀，均分成两份作为试样，分装，密闭，于0℃~4℃保存。注：以上样品取样部位按GB2763附录A执行。7分析步骤7.1提取与净化7.1.1大米、大豆、栗子、洋葱、菠菜、油麦菜、茄子、马铃薯、桔子、蘑菇、茶叶、牛奶称取5g（精确至0.01g）试样于50mL离心管中，如果为干燥样品则加5~8mL水，视具体样品而定，浸泡0.5h。加入乙酸-乙腈溶液使乙腈和水总体积为20mL，均质0.5min，摇匀，在40℃以下超声提取30min，4000r/min离心10min。取上清液1.0mL，加适量基质分散固相萃取剂净化，剧烈振摇1min，4000r/min离心10min，取上清液用0.2µm滤膜过滤，用液相色谱-质谱/质谱仪测定。7.1.2鸡肝、猪肉GB23200.39—20163称取5g（精确至0.01g）试样于50mL离心管中，加入约3g无水硫酸钠，混匀，加入10mL乙酸-乙腈溶液，10mL正己烷，均质3min，4000r/min离心10min，转移提取液到分液漏斗中，充分摇匀后静置分层，收集乙腈层。按同样操作重复提取一次。用10mL乙腈洗涤正己烷层，摇匀后静置分层，收集乙腈层。合并三次收集的乙腈层，在40℃下旋蒸至近干，用乙酸-乙腈溶液定容到20mL，取1.0mL，加适量基质分散固相萃取剂净化，剧烈振摇1min，4000r/min离心10min，取上清液用0.2µm滤膜过滤，用液相色谱-质谱/质谱仪测定。7.2测定7.2.1液相色谱参考条件a)液相色谱柱：ACQUITYUPLCBEHC18,50mm×2.1mm（i.d.），粒度1.7µm，或性能相当者。b)柱温：35℃。c)流动相梯度：见表1。表1流动相洗脱梯度表时间(min)流速(mL/min)10mmol/L乙酸铵溶液（4.10）（%）甲醇（%）曲线类型1Initial0.2590.010.020.500.2590.010.0132.500.2550.050.0643.000.2590.010.01d)进样量：2.0µL。e)样品室温度：10℃。7.2.2质谱参考条件见附录A。7.2.3标准曲线的配制以5.0g空白样品通过前处理步骤制备基质空白溶液，将标准中间溶液稀释至2.0、5.0、10.0、20.0、40.0、100.0ng/mL，不过原点做基质标准工作曲线，宜现用现配。7.2.4定量测定本方法中采用外标校准曲线法定量测定。为减少基质对定量测定的影响，定量用标准曲线应采用基质混合标准工作溶液绘制的标准工作曲线，并且保证所测样品中农药的响应值均在线性范围以内。在上述仪器条件下，噻虫嗪和噻虫胺的保留时间分别约为2.51min和2.92min，多反应离子监测色谱图参见附录B中图B.1。7.2.5定性测定在上述条件下进行测定，试液中待测物的保留时间应在标准溶液保留时间的时间窗内，各离子对的相对丰度应与标准品的相对丰度一致，误差不超过表２中规定的范围。噻虫嗪和噻虫胺标准品的多反应离子监测色谱图参见附录B中图B.1。表2定性测定时相对离子丰度最大容许偏差相对丰度（基峰）50%20%至50%10%至20%≤10%允许的相对偏差±20%±25%±30%±50%7.3空白试验除不加试样外，均按上述操作步骤进行。8结果计算和表述液相色谱-质谱/质谱法测定试样中噻虫嗪或噻虫胺农药的残留量采用标准曲线法定量，标准曲线法定量结果按式（1）计算：VXicim„„„„„„„„„„（1）式中：Xi——试样中噻虫嗪或噻虫胺农药的残留量，单位为毫克每千克（mg/kg）；Ci——从标准曲线上得到的被测组分溶液浓度，单位为微克每毫升（µg/mL）；GB23200.39—20164V——样品提取液总体积，单位为毫升（mL）（本方法中为20.0mL）；m——最终样品溶液所代表试样的质量，单位为克（g）。注：计算结果须扣除空白值，测定结果用平行测定的算术平均值表示，保留两位有效数字。9精密度9.1在重复性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值与其算术平均值的比值（百分率），应符合附录D的要求。9.2在再现性条件下获得的两次独立测定结果的绝对差值与其算术平均值的比值（百分率），应符合附录E的要求。10定量限和回收率10.1定量限本方法对噻虫嗪和噻虫胺的测定低限为0.010mg/kg。10.2回收率本方法的添加浓度和回收率范围见附录C。GB23200.39—20165附录A（资料性附录）噻虫嗪和噻虫胺质谱分析参考条件噻虫嗪和噻虫胺质谱分析参考条件：a)电离方式：ESI+；b)检测方式：MRM；c)毛细管电压：3.00kV；d)氮吹气流量：800L/h；e)锥孔气流量：50L/h；f)去溶剂气温度：350℃；g)放大器电压：650V；h)离子源温度：110℃；i)监测离子、碰撞能量和锥孔电压（见表A.1）：表A.1噻虫嗪和噻虫胺的多反应离子监测分析参数组分监测离子对（ChannelReaction）（m/z）驻留时间（Dwell）（s）锥孔电压（Cone）(V)碰撞能量（CollisionEnergy）(V)噻虫嗪*292/2110.05020.019.0292/1810.05020.010.0噻虫胺*250/1690.05016.015.0250/1310.05016.010.0*为定量离子对以上所列参数是在WatersAcquityTMUPLC-QuattroPremier质谱仪上完成的，列出试验用仪器型号仅是为了提供参考，并不涉及商业目的，鼓励标准使用者尝试采用不同厂家或型号的仪器。GB23200.39—20166附录B（资料性附录）噻虫嗪和噻虫胺标准溶液谱图图B.1噻虫嗪/噻虫胺标准溶液（浓度为10ng/mL）LC-MS/MS的多反应监测（MRM）色谱图GB23200.39—20167附录C（资料性附录）噻虫嗪、噻虫胺回收率范围表C.1噻虫嗪和噻虫胺在不同基质样品中的添加浓度及回收率范围（%）（n=10）样品添加浓度（mg/kg）噻虫嗪回收率范围